Поклевка судака: Как распознать поклевку судака | Рыбак Рыбаку. Рыбацкие Хитрости

Как распознать поклевку судака | Рыбак Рыбаку. Рыбацкие Хитрости

Редко, но всё же несколько раз слышал от рыболовов вопрос «Как клюёт судак?». Статья будет небольшой, зато чётко ответит на этот вопрос.

Поклёвка судака на спиннинг

Спиннинг, наверное, самая популярная снасть для ловли судака, поэтому с него и начнём. А поклёвка судака на искусственные спиннинговые приманки бывает вовсе не заметной. Эта рыба клюёт так, что его поклёвка легко может спутаться рыболовом с касанием блесной дна или растительности.

Чаще всего поклёвка судака может ощущаться как лёгкий тычок. Или вы можете вдруг почувствовать, что тянуть приманку стало как-то тяжелее. Это классическая судачья поклёвка.

Чтобы её улавливать, нужно иметь чувствительное удилище и опыт ловли судака. Вы должны научиться отличать поклёвку судака от касаний приманкой дна или водорослей, чтобы вовремя осуществить мощную подсечку и засечь судака за его твёрдую костистую пасть, иначе процент сходов будет очень большим.

Когда судак берёт у поверхности воды, что бывает очень редко, рыба хватает приманку с сопроводительным плеском, после чего, поняв что попала на крючок, осуществляет жесточайшее сопротивление, стараясь любым способом избавиться от крючка.

Часто такая борьба заканчивается обрывом снасти. Поклёвка судака на поплавочную удочку Кто-то любит хищника спиннингом, а кто-то предпочитает ловлю на живца или кусочки рыбы, с использованием старой доброй поплавочной удочки.

Поклёвка судака на поплавочную удочку

Поклёвка судака на поплавочную удочку может иметь несколько самых частых вариантов. Итак, при ловле на спокойной воде, судак обычно быстро хватает наживку и уходит в сторону от места поклёвки. Поплавок в этом случае просто резко уходит под воду, заставляя рыболова поторопиться с подсечкой.

Подсечку, кстати, не обязательно производить сразу, лучше выждать несколько секунд, пока наживка точно не окажется в пасти хищника. Другой вариант судаковой поклёвки — это так называемый «танец поплавка».

После того как судак начнёт брать наживку, поплавок начинает немного притапливаться и подниматься при этом немного уходя в сторону и в конце концов скрывается под водой.

Такие поклёвки часто наблюдаются при ловле судака на течении. Поклёвка судака на зимнюю удочку Если вы решили половить судака зимой, то вам тоже наверняка захочется узнать, как выглядит его поклёвка, чтобы знать к чему готовиться.

И снова имеется 2 основных варианта зимней поклёвки судака. Первый — вы можете ощутить неожиданную тяжесть, как будто со дна зацепился пучок водорослей. Но скорей всего это будет судак и лучше сразу произвести резкую подсечку.

Второй вариант — лёгкие постукивания судаком по приманке. Эти толчки, кстати, очень хорошо ощущаются в руку, которой рыболов держит снасть, и с подсечкой проблем быть не должно. Правда, есть случаи, когда поклёвку судака можно прозевать, особенно часто такое случается, когда судак хватает блесну во время её планирования.

В этот момент леска не натянута и определить поклёвку очень сложно. Такой же эффект может произойти, когда судак поднимает приманку со дна и рыболов может не заметить ничего подозрительного в поведении кивка.

Подписывайтесь на Рыбак Рыбаку. Рыбацкие Хитрости, ставьте 👍 До встречи!

Примечание:

Все материалы, размещенные на канале, получены из открытых источников и используются в некоммерческих целях.
    В случае неосознанного нарушения авторских прав, материалы будут убраны, после получения соответствующей просьбы от авторов или издателей.
    Если вы являетесь правообладателем данного ресурса и не желаете его свободного распространения, сообщите нам и нарушение будет устранено.

Подледная ловля судака – Новосибисркий клуб охотников и рыбаков HunStory



Рыбалка –

Статьи про рыбалку

С образованием ледостава на водоемах продолжается ловля судака. Эта рыба зимой, особенно в начальный и в конечный ее периоды, ведет активный образ жизни, при­влекая внимание многих любителей подледной ловли.

В отличие от щуки судак держится в зимнее время ста­ями, на кормежку почти на протяжении всей зимы далеко от своей стоянки не уходит. Рыболову необходимо, отыс­кивая его стоянку, определить и «тропы» к кормовым мес­там. В перволедье и в начале зимы судак обычно выходит на ближайшую от места стоянки песчаную или иловато- песчаную отмель, расположенную вверх по течению. По­нятие «отмель» здесь весьма относительное. Если, к при­меру, глубина места стоянки рыбы – 10-12 м, то глуби­на отмели бывает не менее 5-6 м.

При выборе мест стоянки и жировки рыбы надо прояв­лять определенное терпение. Найти судака, прямо скажу, не совсем простое дело. Нрав у него совсем не такой, как, к при­меру, у окуня. А чтобы привлечь внимание судака, особенно не совсем голодного, надо «играть» блесной или судаковой мормышкой не менее 12-15 мин. В местах кормежки при от­сутствии поклевок новую лунку следует делать не ближе 8- 10 м от старой. В местах стоянок судак обычно хватает при­манку, только находящуюся в самой непосредственной бли­зости от него. Поэтому в таких местах, как правило, лунок приходится делать много, и каждая последующая должна находиться не дальше одного метра от предыдущей. Более ус­пешной ловля обычно бывает в местах кормежки рыбы.

В перволедье судак нередколовится весь световой день, но лучше утром и вечером. Замече­но, что период, когда лед не по­крыт полностью снежным по­кровом, является наиболее ус­пешным для его ловли. Любит он в это время стоять в тени от «островов» непрозрачного льда. В декабре клев заметно ослабе­вает. Рыба больше стоит на ме­стах зимовки, покормиться вы­ходит только в ранние утренние и поздние вечерние часы, а в сильные морозы вообще не проявляет интереса к пище. По моим наблюдениям, вечер­ний клев в декабре нередко бывает довольно неплохим после захода солнца и наступления сумерек.

Я уже упоминал о довольно высокой результативности ловли судака ходовой донкой. Несколько не очень удачных выходов на ловлю судака с мормышкой заставили меня задуматься о возможности подледной ловли этой рыбы ходовой донкой. Конечно, дело это в зимнее время не толь­ко необычное, но и достаточно проблематичное. Но оказа­лось, что проблема эта вполне решаема.

Обычная зимняя удочка с катушкой и определенным за­пасом лески вполне пригодна для ловли рыбы предлагае­мым способом. Безусловно, отдельные детали удочки, ис­ходя из опыта ловли, следует изменить и доработать. Винипластовый хлыстик, которым оборудуются многие зимние удочки, необходимо заменить на стеклопластиковый. Жесткость этого хлыстика позволяет надежно подсечь рыбу при далеко отпущенной приманке. Длина хлыстика не должна превышать. 18-20 см.

Удочка должна быть оборудована катушкой с фиксато­ром разматывания барабана. Катушка должна иметь запас лески диаметром 0,30-0,35 мм около 70-80 м, так как при­манку нередко приходится отпускать на 50-60 м, а порой и дальше. На леске, начиная от 25 м, а затем через каждые 5 м весьма желательно закрепить небольшие узелки из цвет­ных ниток – это помогает установить удаление приманки от лунки и зафиксировать, на какой длине лески произош­ла поклевка, что немаловажно при ловле.

Кивок в снасти обязателен, но он служит не для созда­ния игры приманки, а для сигнализации поклевки, особен­но, когда удочка не находится в руках рыболова. В боль­шинстве случаев при выполнении намотки лески на катуш­ку поклевка достаточно хорошо ощущается рукой. Для изготовления кивка можно использовать даже достаточно жестковатые спиральные и пластинчатые пружины и меди­цинские резиновые трубки небольшого диаметра. После­дние, кстати, наиболее подходят для изготовления кивка.

Грузило снасти является составным. Основу составляет закрепленное к концу лески небольшое свинцовое грузило конической формы (ориентировочные размеры показаны на рисунке). Передняя часть грузила имеет небольшое колеч­ко для крепления лески. По окружности широкой части через 90 градусов следует впаять четыре небольших штырь­ка длиной 3-3,5 мм из проволоки диаметром 0,6-0,7 мм.

Штырьки служат для сцепления грузила с грунтом дна, предотвращая снос его течением. Для различных условий ловли надо сразу делать несколько разных по весу грузил. Однако вес основного грузила должен быть не очень зна­чительным, чтобы оно под действием течения могло как можно дальше уйти от лунки.

Дополнительные грузики (спиральные свинцовые шай­бы) нанизываются на леску, доходят под действием тече­ния и веса до основного грузила и огружают его постепен­но до веса, когда оно опустится на дно.

Для изготовления спиральных шайб потребуется листо­вой свинец толщиной 0,8-1,0 мм. За неимением такового в листовую пластину можно без особого труда превратить методом ковки какой-либо более или менее значительный по величине свинцовый предмет. Из пластины надо выре­зать полоски длиной 60-80 мм и шириной 3,5 мм. Затем эти полоски скручивают вокруг палочки диаметром 3,5 мм в круговую спираль. Изготовленные таким способом спи­ральные шайбы легко одеваются на леску и также легко с нее снимаются. Делать их следует азными по весу, и за­пас их у рыболова должен быть не менее 10-12 штук.

В качестве приманки используется самодельная мор­мышка из пенопласта. Для изготовления ее берется крю­чок № 10-№ 12 с длинным цевьем, на котором закрепля­ется пенопластовая «оливка» (длина 15-16 мм, ширина 7- 7,5 мм), покрашенная в черный цвет.

Крепится мормышка к леске на поводке длиной 35- 40 см с помощью карабинчика и заводного кольца. Степень прижима друг к другу витков заводного колечка сле­дует несколько ослабить (увеличить чуть-чуть между ними зазор с помощью лезвия небольшого ножичка) – это по­зволит поводок с мормышкой при необходимости легко одевать на леску и так же легко снимать.

А теперь о технике и тактике ловли. На выбранном участ­ке водоема (лучше уже вам знакомом), с ровным дном, без зацепов, с достаточным течением, но не слишком значитель­ным, бурится лунка с максимально возможным наклоном ледобура к направлению течения. Делается это для того, что­бы свести к минимуму возможность повреждения лески об острые кромки поверхности льда лунки при вываживании крупной рыбы на значительном удалении ее от лунки.

Опустив основное грузило в лунку, приступают к страв­ливанию лески с катушки. При ловле на глубинах до 10 м на первый раз вполне достаточно отпустить леску с грузи­лом до 30-и метровой отметки. После этого можно присту­пить к огрузке основного грузила. Обычно 4-6 шайб бы­вает достаточно, чтобы грузило оказалось на дне. Замеча­ется это по небольшому ослаблению лески, если последнюю натянуть и быстро отпустить. При большой глубине места лова и достаточно сильном течении для определения поло­жения грузила требуется уже некоторый опыт. На всякий случай, если есть сомнения в нахождении грузила на дне, следует «послать» к грузилу еще одну шайбу.

Теперь, насадив на крючок мормышки наживку и вве­дя в заводное колечко леску, приманку опускают в лунку. В качестве наживки можно использовать пучок червей, резку свежей белой рыбы, твистер с короткой хвостовой частью, малька. Практика подледной ловли судака говорит о том, что лучше в это время он берет все-таки малька.

Ловля рыбы ходовой донкой, в общем-то, достаточно активна. Дождавшись, когда приманка опустится до гру­зила, приступают к ловле. Прежде всего рыболов должен занять у лунки наиболее удобную для ловли позицию. При небольшом ветре лучше садиться слева от лунки так, что­бы удочка с максимально возможным наклоном ко льду находилась перпендикулярно к направлению течения. Так лучше делать намотку лески на катушку и при поклевке своевременно, без помех выполняется подсечка. При силь­ном и порывистом ветре, безусловно, рыболов садится спиной к нему и держит удильник под некоторым углом к направлению течения.

Суть ловли состоит в чередовании намотки лески на ка­тушку с непродолжительными паузами (остановками). На­мотка лески должна производиться в медленном темпе, иногда после паузы полезно сделать небольшой рывок удильником и в быстром темпе подмотать леску. Намотка лески не должна носить продолжительный характер. После выполнения 10-12 оборотов катушки делается пауза в не­сколько минут. Конечно, паузы можно увеличить и даже на некоторое время положить удочку на лед, но результатив­ность ловли все-таки выше при указанном сочетании на­мотки лески и остановками в движении приманки до 5- 7 минут.

Поклевки происходят как при движении приманки, так и при остановках движения, но чаще они случаются в пер­воначальный момент движения приманки после паузы. Когда удочка находится в руках рыболова, поклевка в большинстве случаев достаточно хорошо ощущается рукой в виде небольшого рывка, а при движении приманки неред­ко-в неожиданно возникшем, как зацеп, увеличении со­противления намотки лески на катушку. Однако не всегда при далеко отпущенной приманке поклевка судака быва­ет явной и достаточно хорошо выраженной. По этой при­чине подсечку сильным и резким, но не слишком размаши­стым рывком руки следует делать даже при самом неболь­шом намеке на нее (чуть-чуть изогнулся кивок или произошла едва заметная задержка в движении приманки).

При отсутствии поклевки проводка повторяется. Леска перед этим полностью наматывается на катушку, но ничего с нее не снимается. Удочку с грузилом и приманкой поло­жите на разостланный рядом с лункой кусок клеенки. От­жав фиксатор разматывания барабана катушки и придер­живая свинцовые шайбы, основное грузило отправьте в лунку. На этот раз грузило можно отпустить подальше от лунки, до отметки в 40 м и даже дальше. Кстати, при лов­ле на глубинах более 10 м леску с катушки следует страв­ливать, если позволяет течение, не меньше, чем до отмет­ки в 40 м. При уходе грузила на планируемое удаление, так же, как и в выше описанном случае, приступают к посте­пенной огрузке основного грузила свинцовыми шайбами. Если же несколько проводок (6-8) оказались безрезультат­ными, то место ловли следует сменить.

Может быть, кому-то покажется описанный способ лов­ли слишком хлопотным, но это не совсем так. По мере при­обретения опыта на выполнение всех операций време­ни тратится все меньше.

В конце зимы стаи судака порой начинают совершать подвижки, часто меняя места, что, безусловно, затрудня­ет поиски. Но при обнаружении стоянки рыбы ловля не­редко бывает довольно успешной. Для облегчения поисков стоянок рыбы в это время лучше выходить на ловлю груп­пами в несколько человек.

В глухую пору с сильными морозами охотиться за су­даком почти бесполезно. Только в длительные оттепели случается его ловить, да и то в большинстве случаев по­падаются небольшие экземпляры.

При блеснении судака зимой подходят небольшие и узкие блесны, оснащенные припаянным к блесне крупным одинарным крючком № 10-№ 12. Практика показывает, что блесны с одинарным впаянным крючком более улови­сты, так как лучше «играют». В зимний период, когда ак­тивность и сопротивление рыбы при вываживании замет­но снижаются, применение тонкой лески и ходовые каче­ства приманки приобретают важное значение.

В перволедье судака привлекает «игра» блесны, когда приманка почти все время находится в движении, но уже к концу этого периода хищника больше соблазняют, осо­бенно при плохом клеве, более медленные движения при­манки без частых и резких рывков удильника.

В период заметного снижения активности рыбы, а это уже случается к концу декабря, наиболее часто вызывает хватку приманки следующий прием.

Блесна опускается до дна, но полностью на дно не ло­жится, будет хорошо, если приманка наклонится к плос­кости дна на 50-60°. Затем приманка поднимается на вы­соту до 10 см и после короткой паузы с очень незначитель­ными подергиваниями вновь опускается до дна. Приманка при выполнении этого приема напоминает поведение не­большой рыбки, отыскивающей на дне водоема корм. На выполнение подобных этому приемов следует обратить самое пристальное внимание, так как только они могут в это время обеспечить успех ловли. «Игра» приманки мак­симально должна соответствовать естественному поведе­нию и движениям рыбок. Нельзя забывать, что жертвами хищников в большинстве случаев становятся больные и ослабевшие рыбки, которые уже не способны совершать быстрые и резкие движения. Значит, частые и резкие рыв­ки удильником могут только насторожить и отпугнуть рыбу.

Весной, в середине марта, активность судака заметно возрастает. И он постоянно в поисках корма перемещает­ся по водоему, нередко значительными стаями. Отыскать одному в это время стаю бывает нелегко, поэтому, как уже упоминалось, лучше охотиться за ним группой рыболовов из 3-5 человек. В это время приносят успех уже более энергичные движения приманки. Успеху ловли в немалой степени способствует и дух соперничества, который всегда проявляется у жирующих большой стаей хищников, что очень характерно для судака в эту пору.

Поклевка судака в большинстве случаев напоминает зацеп движущейся приманки за подводный предмет. По­чувствовав это, рыболов немедленно должен сделать силь­ную и резкую подсечку. Судак порой (зимой с ним случа­ется это чаще), зажав блесну своими костлявыми челюс­тями и не дав ей зацепиться во время подсечки, идет спокойно до самой лунки. Но стоит его подвести к кром­ке, как хищник неожиданно разжимает челюсти и уходит. Поэтому всегда полезно, если вы, почувствовав, что судак схватил блесну, подсечку для надежности повторите два- три раза. При вываживании рыбы нельзя ни медлить, ни ослаблять натяжение лески. Практика убедительно доказы­вает, что он слишком часто при ослаблении натяжения лески сходит с крючка.

Хорошо судак берет на протяжении всего периода под­ледного лова на описанную выше крупную мормышку. Полезна и незаменима эта приманка при ловле в сильно захламленных местах. Движения мормышки в перволедье и в конце ледостава должны бить такими, как и в летний период. Среди зимы судак очень редко берет на блесну, а вот мормышкой с насадкой, совершающей небольшие ко­лебательные движения с частыми и короткими паузами, нередко соблазняется. В качестве насадки используются черви (пучок). Кусочки рыбы и малек, живой или мертвый. Лучшей насадкой считается небольшой малек, длиной 3 – 4 см. При плохом закреплении малька на крючке судак часто срывает его при поклевке, а чтобы это происходило реже, необходимо для более надежного крепления исполь­зовать малый крючок мормышки, за который цепляется головка рыбки, а в хвостовую часть вводится основной крючок.

В местах, где судак достаточно многочислен, широко применяются для его ловли жерлицы. Используются они, как и при ловле щуки, попутно с другими, более активны­ми способами ловли. Расставляются жерлицы в местах зимовки рыбы, на «тропах» движения судака к местам кормежки и в вероятных местах нахождения рыбы во вре­мя жировки.

Берет судак на живца охотнее, чем на другие приман­ки. Наиболее успешной ловля бывает в ноябре-декабре и по последнему льду, начиная с марта. Лучшее время для ловли на протяжении всей зимы – утро и вечер. Ловля судака зимой с помощью жерлицы мало чем отличается от описанной уже выше ловли щуки. Так как судак часто хва­тает живца поперек, то лучше его насаживать одним из крючков тройника под верхний плавник. А чтобы рыбка продолжительное время оставалась живой, один из крюч­ков необходимо спилить, а вместо него припаять новый, меньшего размера и сделанный из более тонкой проволо­ки. Живец, как показывает практика, насаженный на тон­кий и небольшой крючок, живым остается весь день. При поклевке (срабатывании сигнализатора) медлить с подсеч­кой нельзя. Судак обычно, схватив живца и крепко зажав его своими челюстями, старается уйти в ближайшее укры­тие. Подсечку следует делать сильно и резко после того, как вы, взявшись за леску, почувствуете ее натяжение. При вытаскивании из лунки крупных экземпляров рыбы луч­ше пользоваться багориком.

Похожие материалы:

 

Добавить комментарий

Ловля судака зимой Поклевка. РФ

В зимнее время судак придерживается определенных участков водоема, внутри которых совершает постоянные миграции в поисках пищи. Наиболее перспективными местами для ловли судака являются глубокие русловые ямы, свалы в ямы и предрусловые бровки с глубинами 6-7 метров и более. На меньшую глубину судак зимой выходит редко, как правило, во время сильных оттепелей, которые сопровождаются существенным паданием атмосферного давления. Во время таких оттепелей на неглубокие поливы устремляется большое количество мелкой рыбы, за которой и следует судак. Разумеется, такие мелководные участки могут быть перспективными для ловли судака только в том случае, если они размещены в непосредственной близости от мест его постоянного обитания.

В пределах одного глобального участка, который может быть представлен местом слияния двух рек или основной реки с крупным притоком, общая популяция судака разбивается на отдельные группы. Каждая группа может состоять из нескольких десятков особей. Замечено, чем мельче размеры составляющих группу особей, тем крупнее стаи они образуют. В целом можно сказать, что зимняя ловля судака сводится к облавливанию выбранного перспективного участка, на который, следуя маршруту охоты, выходит каждый раз новая стая клыкастых.

 

Поиск активного судака

 

Чтобы ловля судака зимой была максимально успешной, рыболов должен знать не только расположение глобального участка, на котором обитает эта рыба, но и распределение глубин внутри самого участка. Как уже было сказано выше, наиболее перспективными местами для ловли судака являются глубоководные бровки и свалы, вдоль которых клыкастый охотится за мелкой рыбой. Именно с разведки таких участков стоит начинать поиск активного судака.

Свал — это более или менее резкое понижение рельефа дна к основному руслу. Отметим, что и на самом свале можно выделить участки, которые будут наиболее перспективными для ловли судака. Такие места характеризуются либо резкими переломами в рельефе дна, либо какими-то искусственными или естественными препятствиями на нём. В первом случае это могут быть небольшие столы, резкие бровки или «пупки» на самом свале, во втором — крупные валуны, завалы коряжника или другие затопленные объекты. В случае обнаружения подобных неоднородностей дна желательно отметить их координаты в навигаторе или каким-либо другим способом.

Если поиск активного судака на свале не дал результатов, следует проверить на наличие рыбы прилегающие к руслу глубоководные поливы. Поиск судака на поливах осложнен тем, что зачастую приходится облавливать большую площадь относительно однородного участка. Но и в этой ситуации знание рельефа дна поможет рыболову быстрее обнаружить активного судака. Даже относительно ровное дно полива имеет некоторые неровности. Это могут быть русла затопленных речушек, небольшие ямки и «пупки» и т.д. Подобного рода дефекты дна привлекают к себе мелкую рыбу, а значит и судак не обойдет их стороной. Не следует также забывать о различного рода укрытиях, о которых упоминалось выше.

Для поиска активного судака лучше всего применять балансир. В отличие от вертикальной блесны, он имеет более размашистую игру, чем привлекает активного хищника с большего расстояния. При ведении разведки вдоль свала необходимо пробурить поперек него несколько лунок, от русла до верхней границы свала. Достаточно уделить каждой лунке по две минуты, чтобы общая картина на данном участке стала ясна.

В случае отсутствия поклевок на выбранном месте необходимо сместиться далее вдоль свала. На поливах разведка проводится на заранее известных локальных участках, конечно, если данные о таковых имеются. В противном случае применяется разведка широкой полосой в выбранном направлении. Ускорить процесс поиска активного судака на поливах можно, объединив усилия нескольких рыболовов, которые действуют по заранее обговоренному плану.

 

Ловля судака на балансиры

 

Балансиры можно смело назвать лучшими искусственными приманками для ловли активного судака зимой. Широкая, размашистая, можно даже сказать агрессивная игра балансира способна привлечь внимание кормящегося судака с большого расстояния. Для ловли применяются в основном балансиры длиной от 5 до 7 сантиметров, в редких случаях, при целенаправленной ловле крупного судака, размер приманок может достигать 10 и даже 12 сантиметров.

Техника ловли на балансир довольно проста, её без труда сможет освоить каждый рыболов. Прежде всего нужно опустить приманку на дно, или, как говорят рыболовы, «нащупать дно». После этого, медленно приподняв её на необходимую по мнению рыболова высоту (так задается нижний предел «работы» балансира), взмахом удильника производится плавно-ускоренный подъем приманки, в верхней точке которого он (удильник) быстро опускается вниз, в исходное положение. Под водой при этом наблюдается следующая картина: оторвавшись от дна, балансир энергично уходит от исходной точки вверх и в сторону. При сбросе удильника ускоренное движение приманки прекращается, она разворачивается и по дугообразной траектории возвращается в исходное положение. При повторном взмахе и опускании удильника балансир описывает подобную траекторию.

Выше была описана базовая техника зимней ловли на балансир, которую можно разнообразить более или менее высокими подъемами (взмахами) удильника, постукиванием приманкой по дну, плавными качками с очень маленькой амплитудой и т.д.

Предлагаемые в продаже балансиры, как правило, не требуют никакой доработки. Единственное, что стоит отметить: приманки, брюшной тройник которых оснащен «глазиком», в большинстве случаев являются более уловистыми, чем лишенные этой мелочи балансиры.

 

Ловля на вертикальные блесны

 

В целом по уловистости вертикальные блесны уступают балансирам, но в периоды слабой активности судака они остаются незаменимыми. Относительно монотонная игра вертикальной блесны не привлечет рыбу с большого расстояния, но если приманка «мелькает» под самым носом у хищника, то с большой долей вероятности поклевка будет, даже если этот конкретный судак не собирался охотиться в ближайшее время.

Техника ловли на блесну заключается в подъеме приманки короткими рывками, в заключительной фазе которого следует сброс удильника в исходное положение, благодаря чему блесна свободно планирует в прежнюю точку, переваливаясь при этом со стороны в сторону. Приманка, как правило, опускается не строго под лункой, а на некотором удалении от вертикальной оси проводки, что является следствием воздействия на нее водных масс. Делать слишком резкие рывки не стоит, зачастую судак плохо реагирует на быстро движущуюся цель. Полезно время от времени постукивать приманкой по дну, поднимая облако мути. Главным водным горизонтом, который в первую очередь стоит «прощупывать» при зимней ловле судака, является придонный. Если первые 7-10 минут ловли не дали ни единой поклевки, нужно подниматься на 1 метр выше, подматывая соответствующее количество лески.

Можно попытаться повысить свои шансы на успех, подсадив на крючок блесны кусочек «белой» рыбы.

Как в случае с балансирами, так и в случае с вертикальными блеснами цвет приманки ключевого значения не имеет, хотя некоторое предпочтение можно отдать красным тонам. Также судачатники отмечают хорошую уловистость желтых, посеребренных и луженых приманок. Но столь разнообразная цветовая гамма предлагаемых производителями блесен, которые мы можем видеть на рыболовном рынке, является скорее маркетинговой хитростью, а не реальной необходимостью. Дело в том, что различать цвета приманок рыбы могут только в условиях хорошей освещенности, а на большой глубине, да еще и под покрытым снегом льдом царит полумрак, в котором в выгодном положении могут оказаться только флуоресцирующие приманки.

 

Зимняя ловля судака на мормышки

 

Для ловли судака используются крупные мормышки, вес которых может достигать 20 грамм, а на большой глубине и сильном течении и того больше. На крючок мормышки насаживается кусочек рыбки или мелкая рыба целиком. Рыбка насаживается на мормышку таким образом, чтобы в воде она приняла горизонтальное положение. В данном случае может использоваться как свежая насадка, так и мороженная.

Проводка мормышки заключается в плавных медленных подъемах и опусканиях приманки. В верхней и тем более нижней точках проводки желательно делать паузы. После серии подъемов и опусканий мормышку с насадкой можно оставить на дне на довольно длительное время, контролируя снасть по полусогнутому кивку.

 

Выбор снасти

 

Так как зимняя ловля судака практически всегда осуществляется на больших глубинах, оснащение удильника катушкой является обязательным требованием. Более того, желательно использовать довольно крупные инерционные катушки диаметром до 90 мм, которые позволяют быстро выматывать леску. Конечно, большая катушка загрубляет снасть, но при ловле на балансиры и вертикальные блесны особая деликатность ни к чему.

Важной особенностью снасти является жесткость удильника. Дело в том, что у судака жесткая и костлявая пасть, и чтобы пробить ее, необходимо выполнить очень резкую и жесткую подсечку. По этой же причине большое внимание следует уделять остроте крючков.

Что касается кивка, то его наличие считается обязательным условием. Этот элемент снасти позволяет рыболову придавать приманке плавные колебательные движения, хорошо провоцирующие рыбу на поклевку. Также кивок информирует рыболова о первых прикосновениях судака к приманке, почти всегда свидетельствующих о поклевке в ближайшее время. Зачастую судачатники используют кивки из часовой пружины либо покупают готовые толстые лавсановые кивки, хорошо подходящие для подобной рыбалки.

На леске долго останавливаться не будем — в большинстве случаев подойдет обычная монофильная диаметром 0,2 – 0,3 мм с небольшим коэффициентом растяжения. Плетеная леска для зимней рыбалки не подходит.

Ловля судака на силикон

Рейтинг:   / 0

В этой статье я расскажу об очень увлекательной ловле еще одного пресноводного хищника – судака. По размеру он идет третьим, после сома и щуки (среди хищных рыб).

Судак – рыба более привередливая, чем щука, ему необходим лучший кислородный режим, поэтому в озерах вероятность встретить его минимальная, а если такая встреча и происходит, то только неподалеку от впадающих в водоем рек, либо же подводных источников.

Да и то, не во всякой реке ему будет комфортно. Если в реке много щуки, она чаще всего вытесняет его, так как кормовая база у нее намного шире(пасть у судака не очень широкая, поэтому питается он только прогонистой рыбой, в отличие от щуки, которая может проглотить почти любую рыбу, которая не превосходит ее по размеру).

Судак считается ночным хищником, поэтому лучшее время для его ловли – поздний вечер и раннее утро(до восхода солнца и еще немного после него). В реке он в основном держится на фарватере(посередине), скрываясь в глубоких ямах, выходит из которых только на ночную охоту.

Снасть, чаще всего используемая для ловли судака – спиннинг хотя также довольно эффективно используется и донка с живцом. Однако при использовании спиннинга вся инициатива переходит к рыболову, да и сам процесс куда более захватывающий.

Как видно из названия статьи, сегодня я расскажу вам о ловле судака на силиконовые приманки(джиг- спиннинг), кроме силикона судака также ловят с помощью специальных блесен – девонов. Они очень тяжелые(20-35 г.), ловля ими также достаточно эффективна, однако лично я предпочитаю силикон, так как в нем полностью скрывается крючок, девоны же очень хорошо цепляются своими тройниками за всевозможные коряги, среди которых и следует искать судака.

Ловить этого хищника лучше всего с лодки, так как это дает вам возможность добраться до любой ямы, благодаря чему вы можете ловить судака в течение дня. При ловле с берега вы будете ограничены во времени(о нем я уже писал выше). Если яма находиться неподалеку от берега, над ней образуется либо водоворот, либо обратное течение, что хорошо заметно.

Яма, расположенная в фарватере почти во всех случаях не дает возможности опознать себя визуально, для ее обнаружения надо либо спросить о ней у местных(не факт, что они вам скажут, впрочем бутылка водки – надежный помощник), либо же использовать эхолот, который проинформирует вас и о наличии рыбы в месте лова.

Итак, становимся над ямой и начинаем ловить следующим образом:…, ах да, забыл сказать, что лучше использовать силиконовые приманки 4-8 см в длину предпочтительно белого, желтого, салатового цветов (по моим наблюдениям), однако необходимо иметь в запасе приманки и других расцветок.

Теперь продолжим: становимся неподалеку от ямы, забрасываем, и делаем примерно такую проводку: едва приманка коснеться дна сразу потихоньку подматываем, через 2-3 секунды перестаем, ждем, пока приманка опять коснется дна. Как и в случае со щукой, поклевка судака чаще всего происходит именно в этот момент.

Как правило, поклевка проявляется либо как легкое подергивание, либо как исчезновение веса приманки, либо наоборот, появление какой-то тяжести. во всех этих случаях не надо подсекать сразу же, поскольку судак всегда хватает жертву поперек ее тела, и только проплыв немного с ней, начинает ее глотать.

Посему не спешим сразу подсекать, а наслаждаемся мгновением(главное не переборщить, а то опомнитесь и начнете рвать волосы), и через 2-2.5 секунды делаем энергичную и жесткую подсечку. Обычно судак – не очень серьезный противник(кроме рекордных экземпляров), однако к его первому рывку нужно быть готовым.

Как только часть его туловища показывается из воды, он прекращает сопротивляться, и усыпает на воздухе за 2-3 минуты. После поимки судака, обязательно обловите это место еще раз: есть большая вероятность, что в этой яме скрывается еще несколько хищников. Перед тем, как менять место. обязательно перепробуйте весь арсенал приманок.

Похожие материалы:

Более новые статьи:

Более старые статьи:

Капризный судак. Ловля судака на джиг.

Как я рассказывал в прошлой записи своего блога, лето в этом году погодой нас не радует. Впрочем, ничего нового. Такая ситуация не только в нашем регионе, и не только в центральной части России. Этим летом с погодой беда повсеместно, и, по всей видимости, чуда ожидать не стоит. Придётся с этим мириться и как-то подстраиваться под сложившуюся ситуацию, ведь она – ситуация эта – внесла ощутимые изменения в привычный всем летний «режим» жизни и рыбалки.

Сетовать о том, что во второй-третьей декаде июня вода по-прежнему оставалась ещё высокой и очень холодной для этого промежутка времени, думаю, не стоит. Те, кто «в теме», прекрасно это знают и наверняка тоже с этим столкнулись. Однако хотелось половить судака, но для начала его надо было найти.

Первый выезд на Волгу дал ясно понять, что до тех пор, пока вода не прогреется хотя бы градусов до 18, судака, на глубинах свыше семи метров, искать не стоит. Его там просто напросто нет. Ну а чего ему там делать, если там нет еды? Логично было искать его, скажем так, на «запасной» акватории, по менее глубоким участкам реки, и это принесло первые плоды. Судак был обнаружен. Правда, очень капризный, но, всё же, судак. Обнаружен он был на участках реки с глубинами максимум 5-6 м и довольно примечательным рельефом дна, где имелись ярко выраженные продольные бровки с перепадами глубин с трёх на четыре метра, с четырёх на шесть. Так он и стоял весь размазано по этим бровкам и особой активностью не отличался. На нескольких постановках увидели всего пару поклёвок, хотя по опыту прошлых лет знали, что здесь он точно есть, да и чуйка подсказывала.

Последующая неспешная проработка площади одной из точек, различными приманками и способами их подачи, внесла окончательную ясность в то, чем там судак таким занят, что не спешит клевать, и что ему надо, что бы его расшевелить. В ход шли десятки различных приманок и вариантов их монтажа. Сперва, классика жанра – упитанные виброхвосты 3,5–4,5 дюйма на джиг-головках; затем различные твистеры от мала до велика на шарнирном монтаже; и даже диповые воблеры. Но всё молчало. Решил проверить реакцию судака на каролину, результат оказался тем же – всё впустую. Рыба отказывалась есть даже именитого Hazedong от Megabass. Напарник намекнул, мол, может, дальше двинем, раз тихо? Мне же нутро подсказывало, что рыба тут есть, просто мы что-то делаем не так, и нужно искать «ключик». Путём экспериментов было выявлено идеально сочетание всех нюансов, при котором судак всё-таки стал обращать внимание на наши приманки. А экспериментировали примерно так. Пробовали предлагать рыбе похожие приманки, только по-разному. Напарник использовал такой вес грузика, при котором зависание приманки на течении, было чуть дольше, чем у меня, и совершал анимацию с резкими «высокими» подбросами. Я же ловил с небольшим переутяжелением и делал короткие ступеньки в один оборот катушки, чтобы проводка получалась с максимально коротким шагом и приманка проходила как можно ближе ко дну. Мне посчастливилось первым «распечатать» эту точку поимкой хорошего судачка, соблазнившегося четырехдюймовой Pontoon21 Attira «арбузного» цвета.

Напарник решил, не меняя вес грузика поменять стиль анимации, и тоже стал делать «короткоступную» проводку, но результат остался прежним. У меня же продолжало нет-нет да поклёвывать. После смены грузика на более тяжелый, Михаил сразу же поймал весьма приятного судака.

Характерно было то, что проводку он делал также с короткими проходами, и именно такой анимацией удалось уговорить клыкастого. Однако строить на этом какие-то догадки и уж тем более выводы было очень рано, поэтому мы продолжили экспериментировать с приманками и проводками. Вернувшись к классической проводке «два оборота, пауза», за последующие минут тридцать мы не увидели ни единой поклёвки, а во время перекуса отметили, что обе рыбы были пойманы на похожие по типажу приманки и на очень коротких проводках. Решили, что нужно уделить этому максимальное внимание, так как это и может быть тем самым ключиком к рыбе. Договорились поочерёдно менять стиль анимации, что бы понять, верны ли наши предположения. И как оказалось, они были верны и оправдались почти сразу. Стоило только перейти на короткие проходы вдоль бровки, как тут же следовала поклёвка судака. Ловился он и на джиг-головочный вариант оснащения, и на шарнирный, главным было то, чтобы приманка продвигалась очень медленно, короткими «перебежками», и находилась максимально близко ко дну, а иногда и вовсе волочилась по нему.

В приоритете были приманки подчёркнуто узкого и удлинённого телосложения тёмных оттенков. Однако и другие приманки частично пользовались спросом. Самой убойной приманкой этого выезда у меня стала Attira 4” от Pontoon21 в цвете «варёная сгущёнка» (#117). В целом рыбалка в тот день удалась.

Спустя несколько дней мы снова отправились за судаком, и теперь уже «запасная» акватория стала для нас основной, так как на самой Волге находиться было страшно и небезопасно. Памятуя прошлый выезд и успех тёмных удлинённых приманок, первым делом в воду отправились именно они. Действуя по уже отлаженной, с прошлого раза, схеме, открыть счёт по нужной рыбе удалось почти сразу. Первым поймал напарник, и вообще, на своих червеобразных твистеров он собирал поклёвку за поклёвкой. Клевало у него как из пулемёта, мои же тощие вибрики были не так интересны подводным обитателям. Таких длинных приманок у меня с собой не оказалось, но они явно творили чудеса, и нужно было что-то предпринимать, дабы тоже ловить. Решение я нашёл довольно быстро. Так как нужен был длинный толстый червь с играющим хвостиком, я сделал приманку-франкенштейна. Взял Pillo с откусанным хвостом, отрезал всё лишнее, оставив только тело, и припаял его к такому же по размеру, целому Pillo. Приманку сделал двухцветную. Передняя часть «варёная сгущёнка», задняя – «пепсикола».

Напарник, увидев мой хэндмэйд, спросил, мол, не лишканул ли я с размером? На трофей, говорит, собрался? Я говорю: «Ничего, кто голодный и такое съест!».

На первых же забросах попадается некрупный бершик, а следом за ним докилушный судачишка.

После этого «франкенштейном» соблазнились ещё несколько мелких судачат. Настолько мелких, что даже жалко было «фотоплёнку» на них расходовать. Больше на этой точке ничего хорошего вымучить не удалось. Пару часов ходили по разным наработанным точкам, но как-то всё глухо было, а если кто и попадался, так в основном это были мерные стописятграмовики с молочными клыками. Но вот на горизонте показался интересный участок с очень многообещающим рельефом. Эхолот показывает русловую бровку, глубина 3-5 м, и на повороте дно внезапно начинает уходить на глубину до 12 м, и постоянно скачет то на 5 м, то на 9 м, то снова 4 м. В общем, пришлось немножко погулять по точке и понять, как тут донная картина выглядит, прежде чем сделать правильную постановку. Наверное, имей я более продвинутое устройство, а не мой плюшевый эхолот, представление о происходящем под водой было бы более чёткое, однако, чем богаты, тем и рады. Главное, что мой старичок рельеф отрисовывает и глубину показывает, а остальное, при умении читать водоём, и так более-менее понятно. Встали мы на свале, где глубина была порядка восьми метров, но встали так, чтобы можно было забрасывать на меляк, и потихоньку, стащив приманку на бровку, проводить её на глубине 5-7 м. Первые судачки не заставили себя долго ждать, что подтвердило правильность нашей постановки, и с этой точки в течение последующего часа мы поймали очень много судака. Да, не весь судак был «товарным», попадалось много мелочи, но и хорошие экземпляры тоже присутствовали. На этой точке я ловил исключительно на резину Pontoon21 Ratta 4,25” в расцветках «горбуша» (#407) и «пепсикола» (#424). И да, снова судак реагировал только на коротко-ступенчатую проводку с микроподбросиками, и снова только на переутяжелении.

Весьма интересная точка, как оказалось. Надо будет проверить её в последующие выезды. Мне кажется, у неё огромный потенциал.

Берегите природу! Хороших вам рыбалок…

Ловля судака зимой — TutKlev.ru

Ловля судака зимой – особенная тема. И не стоит скрывать, есть приверженцы именно этой ловли, которые выезжают на заснеженные водоемы целыми отрядами, словно на охоту, на поиски зимнего судака. В большинстве случаев, ловля судака зимой ходовая, необходимо исходить множество заснеженных просторов, прежде чем обнаружится кочующая стая судака.

Конечно, при такой ловле желательно иметь на вооружении хороший эхолот. Ведь стаи клыкастых, зимой постоянно перемещаются по водоему, но если стая найдена, тут уж не зевай, придется приложить все силы и мастерство, чтобы соблазнить привередливого и пугливого хищника на поклевку. Зимняя рыбалка на судака может быть очень добычлива на балансиры, вертикальные блесны и конечно на живца.

Ловим судака зимой.

В последние годы, балансиры совершили настоящую революцию в зимней ловле хищных рыб. Они являются весьма эффективным средством в зимней ловле окуня, щуки и конечно судака. Главной привлекательностью балансира для хищника, является его игра, его отклонение от вертикали и медленный разворот. Хотя, многие рыболовы утверждают, что балансир хорош для активной рыбы и приносит отличный результат по первому и последнему льду. А вот если судак пассивен, а это практически большая часть зимнего сезона, лучшим средством в его поимке являются вертикальные блесны.

Блесны на судака – это узкие, небольшие 5-7 см блесны золотистого или серебристого цвета. Игра вертикальной блесной основывается на медленном подъеме, с длинными до 30 сек паузами, с одним или двумя слабыми подергиваниями. А вот играющая блесна на падении создает иллюзию потенциальной жертвы. Увеличить количество поклевок, можно путем подсаживания на крючок блесны целого малька. Данный эффект можно объяснить очень просто.

Привлеченный игрой блесны, судак подходит издалека, и когда оказывается вблизи приманки, начинает ощущать живой запах малька, что является решающим фактором. Зачастую, судак берет приманку на паузе, когда блесна совершает маленькие колебания, успокаиваясь после подъема. Именно поэтому необходимы длинные паузы в игре вертикальной блесной, между подъемом и падением. А чтобы активизировать хищника на атаку, можно слегка шевелить приманкой на паузе, совершая легкие подрагивания кончиком удилища. План игры блесной таков – легкое шевеление приманкой в течении 10-20 сек и пауза, от 20 до 60 сек, далее подъем на 30 см, опять покачивание и пауза. Такая ловля судака зимой, придет по душе не каждому, но именно такая неспешная, можно сказать ленивая игра блесной очень нравиться вялому хищнику, особенно в глухозимье.

Ловля судака зимой на живца, с помощью зимних жерлиц, весьма актуальная и интересная тема. Живца пускают в полу метре от дна, причем судак, предпочитает бойкого живца, заснувшую рыбку он не берет. Лунку следует обязательно присыпать снегом, чтоб не вызвать лишних подозрений у пугливого хищника.

Следует учесть, что поклевка судака, при ловле на жерлицы, не всегда заканчивается его поимкой, зачастую хищник просто бросает живца, почувствовав сопротивление лески. Именно по этой причине, к зимним жерлицам предъявляются особые требования, именно поэтому пассивная ловля судака зимой практикуется гораздо реже.

Автор Денис Сураев.

Джиговый спиннинг для ловли судака

Ловля хищника осуществляется с использованием различных техник, которые подбираются исходя из используемых искусственных приманок и условий ловли. Так, если планируется ловить судака, который атакует приманку преимущественно со дна, то рекомендуется использовать силиконовые приманки. После заброса важно дождаться пока приманка полностью ляжет на дно и только после этого выполняется пол оборота катушки, затем пауза. Такая проводка среди рыболовов называется ступенчатой.

Успешно ловить судака, да и, к примеру, окуня можно только с использованием джигового спиннинга, главное преимущество которого – легкость и прочность. Снасть позволяет полностью контролировать приманку при выполнении проводки. Однако важно отметить, что выбор спиннинга осуществляться должен исходя из определенных требований.

Как правильно подобрать джиговый спиннинг для ловли хищной рыбы

Первое с чем необходимо определиться – это с длиной снасти. Итак, если ловить планируется на большом водоеме, где потребуется выполнять дальние забросы, то останавливать выбор следует на 3-х метровых удилищах. Для ловли в прибрежной зоне или с лодки достаточно будет иметь качественное удилище, длина которого не будет превышать 2,7 метра. При выборе важно учитывать особенности самого водоема. Так, если забрасывать приманку приходится из-под деревьев, то лучше приобретать короткий спиннинг, длинный больше подойдет для чистых песчаных пляжей.

Особое внимание важно уделить тесту покупаемой снасти, от которого будет зависеть минимальный и максимальный вес приманки, которую можно использовать совместно со спиннингом.

В том случае, если рыбалка проходить будет на реках с сильным течением, то желательно отдавать предпочтение удилищам с быстрым строем и тестом до 30 грамм. Джиговый спиннинг, должен быть легким, поскольку во время ловли его постоянно требуется держать в руке и, ко всему прочему, выполнять забросы.

Во время ловли важно правильно подобрать вариант выполнения ступенчатой проводки. Способов очень много и все зависит только от условий ловли. Если хищник проявляет активность, то паузы между прокрутками катушки выполняются короткие, не более 3 секунд. В том случае если судак или другой хищник полностью игнорирует предложенную приманку, то следует их продолжительность увеличить до 10-15 секунд.

Поклевка судака слабая и выражается в легком ударе, напоминающем глухой зацеп. Своевременно увидеть атаку можно только по кончику джигового спиннинга или провисанию лески, если рыба после атаки поплывет в берег в такие моменты должна последовать резкая, но не сильная подсечка.

Судак (Sander lucioperca) и радужная форель (Oncorhynchus mykiss), откормленные смесью альтернативных микроорганизмов для снижения содержания рыбной муки и жира – показатели роста и качественные характеристики рыб

3.

1.1. Судак

Настоящее исследование подчеркивает результаты, описанные Schafberg et al. (2018) для популяции судака [13]. Судак как хищник был вынужден приспособиться к этой новой, сравнительно более вегетарианской диете, так как 50% рыбной муки и жира были заменены. Судак и радужная форель являются плотоядными животными, но разведение судака немного сложнее, так как радужная форель может справиться с более высокой долей вегетарианских ингредиентов.Показатели роста и конверсия корма в этом исследовании показали, что принятие и конверсия FM не были адекватными для судака (). Важной причиной этого может быть недостаточное переваривание биомассы микроорганизмов, особенно их клеточных стенок. Плотоядные животные отличаются в процессе переваривания/адсорбции сложных углеводов по сравнению с травоядными и всеядными по степени конверсии. Плотоядные животные имеют, например, более низкую активность ферментов поджелудочной железы и кишечника по отношению к сложным углеводам.Таким образом, это также может привести к более медленной и недостаточной конверсии сложных полисахаридов и, как следствие, к более низким темпам роста и увеличению веса [51,52,53].

Таблица 1

Рост и кормовая активность судака ( S. lucioperca ) и радужной форели ( O. mykiss ).

9001 Rainch
Control

409

4 358

98,6

93,8

0,11

Prembing Trib
Параметр
Pike-Pike-Pike
Стандартный Pike

Pike-Pike
Ced Mix
Rainbow Treat
Стандартный промышленный
Rainbow Freat
Free Mix
Rainbow Free Mix управления
Вес начальное (г) 186 ± 41 171 ± 42 169 ± 48 126 ± 26 144 ± 38 148 ± 30
Вес конец (г) 452 ± 103 FK 357 ± 74 392 ± 67 К 508 ± 117 F

5 ± 109 530 ± 118 F
Увеличение веса (г) 278 ± 103 FK 184 ± 74 217 ± 67 K 382 ± 117 F 265 ± 109 381 ± 118 F
Увеличение веса (%) 243 209 232 232 402 403 243 243
Общая протяженность End (см) 35. 5 ± 3,0 35,0 ± 2,0 35,3 ± 1,8 33,8 ± 2,5 32,4 ± 2,5 34,9 ± 2. 2 F
FCR 1.14 F 1,57 1,05 F 0,98 1,03 0,93
SGR (% день -1 ) 0 .78 ± 0,21 F 0,58 ± 0,17 0,66 ± 0,14 1,18 ± 0,26 F 0,88 ± 0,23 1,09 ± 0,20 F
Выживаемость (%) 99,3 99,2 94,7 92,3
К-фактор 1. 00 ± 0,12 FK 0,83 ± 0,07 0,88 ± 0,06 К 1,29 ± 0,09 F 1,18 ± 0,11 1,23 ±
HSI (%) 1,20 ± 0,21 1,20 ± 0,19 1,08 ± 0. 18 1,79 ± 0,29 1,89 ± 0,28 1,78 ± 0,39
IFSI (%) 6,26 ± 0,97 FK 3. 42 ± 0,81 0,81 454 ± 1,02 1,02

270094 2,70094 ± ± 0.86 F 1,96 ± 0,70 2. 29 ± 0,58 К

Судак показал существенные различия в конечной массе рыбы, но уже и в привесе. Стандартный рацион привел к увеличению массы тела на 278 ± 102 г по сравнению с исходной массой. Таким образом, рыба выросла примерно в 2,6 раза. Рыба, которую кормили диетой С, имела вес 217 ± 67 г, что означает, что рыба первоначально прибавила в весе примерно в 2,2 раза. Рыба, получавшая корм Diet FM, прибавила в весе «лишь» в два раза больше своего первоначального веса (183 г ± 74 г).

Филе, полученное из группы FM, было значительно меньше (144 г), чем филе группы откорма S (185 г), но не было различий с филе из группы C (165 г). Как правило, филе составляло около 40% от общего веса каждой группы.

Кишечный жир и IFSI показали значительные различия. Рыба из группы S содержала 28 г жира (IFSI: 6,3%), тогда как диета FM привела к менее чем половине кишечного жира (12 г жира; IFSI: 3,4%), а диета C привела к 18 г жира (IFSI: 4). .5%). Печень рыб, получавших диету S, весила значительно больше (5,4 г), чем печень рыб, которых кормили диетой C (4,3 г) или FM (4,3 г). Эти значения были ожидаемы из-за большего увеличения массы S-рыбы по сравнению с другими группами рациона.

SGR рыбы, получавшей диеты FM или C (0,6% в день -1 ), были ниже, чем у рыб, получавших диету S (0,8% в день -1 ). Та же тенденция была показана для k-фактора (S: 1,0, FM: 0,8 и C: 0,9).Коэффициент конверсии корма (FCR) рационов S и C (оба примерно 1,1) был значительно ниже, чем у рациона FM (1,6). Независимо от рациона рыбы не показали существенных различий в их выживаемости (99%), общей длине (~ 35 см) и HSI (~ 1,2%). С одной стороны, значения HSI (~ 1,16%) в настоящем исследовании были немного выше, чем у Lazo et al. (2017) сообщается по судаку (0,8%; n = 10). С другой стороны, размер выборки в настоящем исследовании также был выше ( n = 66 и 68).Текущие результаты HSI все еще находились в диапазоне, сравнимом со значениями для выращиваемой рыбы [54].

Цвет печени использовался для выявления возможных побочных эффектов в метаболизме печени и накоплении жира (). Изменение яркости (L) и/или увеличение уровня желтизны (b) может свидетельствовать о возможном ожирении печени. Несмотря на то, что цвет печени на 16-й неделе не показал каких-либо существенных различий, расчетная цветовая разница по сравнению с 4-й неделей показала, что все три параметра увеличились. Цвет печени, полученный в результате диеты FM, показал самые низкие значения в целом (т.г., L = 42,1), что привело к большим различиям в окраске по сравнению с окраской печени групп S и C. Из этого можно сделать вывод, что повышенного накопления липидов в печени судака, получавшего FM, не наблюдалось. , являясь своеобразным свидетельством здоровых особей. Это важная часть исключения неалкогольной жировой болезни печени (НАЖБП), поскольку она является наиболее распространенной причиной хронического заболевания печени у всех видов. Это клинический синдром, характеризующийся преимущественным макровезикулярным стеатозом печени [55]. В случае нарушения переваривания липидов изменения в питании и образе жизни могут привести к улучшению здоровья. Поэтому следует обращать внимание на компоненты, содержащиеся в пище, так как они оказывают непосредственное влияние на здоровье или могут способствовать развитию заболеваний [55,56].

Таблица 2

Свежее филе и свежая печень цвета судака (S. lucioperca) и радужной форели (O. mykiss) после 16 недель.

±

K

K

Prembing Trib
Parameter
Pika – Pike-Pike
Standard
Pika
Pike-Pike
Ced Mix
Rainch
Control
Rainbow Freat
Стандартный промышленный
Rainbow Freate
Rainbow Mix
Форель
Контроль
Цвет филе
Л 42. 4 ± 2,1 F 44,7 ± 1,5 43,6 ± 1,6 42,9 ± 2,0 F 41,2 ± 1. 6 42.9 ± ± 2,7 F
± 0,45 1,08 ± 0,38 0,35 1,35 ± 0. 62 2,03 ± 0,96 2,55 ± 1,18 1,47 ± 1,17 F
б -2,12 ± 1,38 -1,58 ± 0,87 -2,24 ± 1,15 3,01 ± 1,13 FK 6,94 ± 1,18 0,63 ± 0. 73 FK
dE Кормсмесь 2,55 ± 0,63 F

5 1,53 ± 0,31 Ж 4,33 ± 0,51 Ж 6,64 ± 1,21 F
Печеночный цвет
Л 47. 1 ± 5,0 F 42,1 ± 5,5 44,4 ± 5,6 29,8 ± 4,0 К 28,7 ± 3,6 26. 4 ± 4,5 K

45 K
A 18.7 ± ± ± 2,5 18,6 ± 3,2 18,7 18,7 ± 26 15,2 ± 2,1 15,7 ± 2,0 15,4 ± 1,8
б 8,58 ± 2,60 6,78 ± 2. 47 7,60045

± 2,68 1,71 1,71 ± 3,34 K ± ± 3.17 -1.82 -1.82 ± 3. 34 FK 90 094
дЕ week4 7,45 ± 2,42 5,81 ± 3,81 6,75 ± 3,90 4,78 ± 2,97 К 4. 69 4,69 ± 2.20 60045 ± ± 3,34 FK
DE FeedMix 4,95 ± 0.91 Ф 2,08 ± 0,62 Ж 1,24 ± 0,43 Ж 3,91 ± 0,91 F

так как это самая важная часть рыбы для потребителя. Помимо цвета филе (), здесь важны общее содержание липидов, а также содержание белка или воды (). Филе группы FM имело значительно меньшее количество белков (FM: 20,5%, C: 20,3%, S: 21,2%) и сухой массы (FM: 23,6%, C: 24,4%, S: 23,9%), но не было значительного различия в их содержании воды и общего содержания липидов. Что касается кормов, не было существенных различий в их сухой массе, золе и общем содержании липидов, но рацион FM содержал меньше этих питательных веществ, чем другие рационы [31].При этом содержание белка в рационах не имело существенных различий (FM: 46,3%, C: 45,8%, S: 45,8%) [31]. Распределение питательных веществ в корме не может быть перенесено 1:1 на особей, что показывает, как меняется обмен веществ в зависимости от биодоступности ингредиентов.

Таблица 3

Параметры питания и показатели качества липидов радужной форели ( O. mykiss ) [31] и судака ( S. lucioperca ) после 16 недель кормления.

-4s 9009]

4 <0,005

Chyshing ShareParameter [% Biomass] Pika – Pike-Pike
Standard
Pika –
Pika – Pike-Pike-Pike
Control
Pika-Pike
Control
Rainbow Freat
Стандартный промышленный
Rainbow Freate
Free Mix
Радужная форель
Контроль
Сухая масса 23. 9 ± 0,6 F 23,6 ± 0,6 24,4 ± 0,6 F 27,63 ± 0,69 28,01 ± 0,69 28. 14 ± 0,68 0.68
± 0,03 1,2 1,2 ± 0,03 1,2 ± 0,03 1. 3 ± 0,1 1,3 ± 0,1 1,3 ± 0,1
Белки 21,2 ± 0,53 F 20,5 ± 0. 51 20.3 ± ± ± ± ± 0.5 191 ± 0.5 19.4 ± 05
Жир 1,1 ± 0,03 1,1 ± 0,03 1,3 ± 0,03 8,2 ± 0,2 F 7,5 ± 0,2 ​​ 7,8 ± 0,2 ​​ F
Отдельные жирные кислоты [г жирной кислоты 100 г
C16:0 пальмитиновая кислота 0. 26 ± 0,01 0,32 ± 0,01 0,30 ± 0,01 1,42 ± 0,04 1,46 ± 0,04 1,39 ± 0. 30 0.30
C16: 1 Пальмитоольная кислота 0,01 ± 0,01 F 0,07 ± 0,01 0,01 ± 0.01 F + 0,04 ± 0,01 0,05 ± 0,01 0,04 ± 0,01
С18: 0 стеариновой кислоты 0,08 ± 0,01 0,08 ± 0,01 0,08 ± 0,01 0,42 ± 0,01 0,43 ± 0,4 0,40 ± 0. 01
С18: 1 олеиновой кислоты 0,38 ± 0,01 0,33 ± 0,01 0,41 ± 0,01 0,30 ± 0,01 0,25 ± ± 0. 29 0.29 0.29 ± 0,01
C18: 2 Линолевая кислота (LA) 0.10 ± 0,01 0.10 ± 0.01 0,10 ± 0,01 0,78 ± 0,01 0,65 ± 0,01 0,76 ± 0,02
С18: 3 у-линоленовая кислота <0,005 <0,005 <0,005 0,01 ± 0,01 0,01 ± 0,01 0,02 ± 0,01
С18: 3 α-линоленовой кислоты (АЛК ) 0. 02 ± 0,01 F 0,01 ± 0,01 0,02 ± 0,01 F 0,14 ± 0,01 F 0,10 ± 0,01 0,15 ± 0,01 0,01 F
C20: 4 Арахидоновая кислота 0,01 ± 0,01 F 0. 01 ± 0,01 0,02 ± 0,01 0,02 ± 0,01 0,03 ± 0,01
С20: 5 эйкозапентаеновая кислота (ЭПК) 0,03 ± 0,01 F

0,01 0,01 ± 0,03 0,03 0,03 ± 0,01 F 0,06 ± 0,01 004 ± 0,01 0,11 ± 0,01 F
С22: 5 докозапентаеновой кислоты <0,005 <0,005 <0,005 0,01 ± 0,01 0,02 0,02 ± 0,01 0,03 ± ± 0,01 0,01
/
C22: 6 DocoSahahahexaEnoiOn Acid (DHA) 0,05 ± 0,01 F 003 ± 0,01 0,06 ± 0,01 F 0,11 ± 0,01 0,15 ± 0,01 0,26 ± 0,01 F

Филе группы FM имело самый яркий цвет (L = 44,7), наименьший уровень красноты (a = 1,08) и более высокий уровень желтизны (b = -1,58), чем филе из групп S и C () . Филе рыб групп S и C значительно отличалось от филе FM.Эти параметры привели к значениям dE > 1 по сравнению с FM, но уже можно было визуально определить, что скругления FM были немного ярче. Более низкий уровень красноты означает сдвиг цвета в сторону зеленого по сравнению с скруглениями C и S. Причиной «зеленого сдвига» является накопление хлорофиллов из Arthrospira sp., тогда как более высокий уровень желтизны обусловлен повышенным содержанием каротиноидов в микроорганизмах в рационе FM [13,20,31].

В настоящем исследовании все группы кормления не показали различий в общем содержании липидов между каждым из филе судака, ~1% является типичным значением для такой нежирной рыбы.В этом контексте Lazo et al. (2017) уже показали сходные значения сухой массы, золы и содержания белка в образцах судака, но сравнительно более низкое содержание общих липидов [54].

Более внимательное изучение профиля жирных кислот показало, что филе рыбы, откармливаемой в группах S и C, содержало преимущественно следующие жирные кислоты в филе в порядке убывания: олеиновая кислота (18:1), пальмитиновая кислота (16:1). 0), линолевая кислота (18:2n6, LA), стеариновая кислота (18:0) и DHA (22:6n3). Профиль ЖК в филе FM немного отличался, и олеиновая кислота и пальмитиновая кислота также были двумя доминирующими ЖК, но содержание олеиновой кислоты (30.0 % жира -1 ) было значительно ниже, чем в филе S (34,6 % жира -1 ), а пальмитиновая кислота (29,1 % жира -1 ) была значительно выше в филе FM, чем в филе S филе (23,6% жира -1 ). Следующими ЖК в филе FM были стеариновая кислота (7,27% жира, -1), LA (6,64% жира, -1) и пальмитолеиновая кислота (6,36% жира, -1). Во всех трех диетах преобладали одни и те же три жирные кислоты в порядке убывания: олеиновая кислота, LA и пальмитиновая кислота [31].Количество олеиновой кислоты в рационе S (50,1% жира -1) было значительно выше, чем в рационе FM (30,5% жира -1) или C (32,3% жира -1) [31]. Кроме того, корма FM и C показали значительно более высокое содержание DHA (~4,6%) и EPA (FM: 2,3% жира -1, C: 3,0% жира -1), чем S (DHA: 1,2% жира). -1 , EPA: 1,3% жира -1 ) [31]. Высокое содержание олеиновой, пальмитиновой, стеариновой и МК кислот в филе идет рука об руку с высоким содержанием тех же жирных кислот в рационах [31].Более того, высокое содержание олеиновой и пальмитиновой кислот во всех группах филе согласуется с результатами предыдущих исследований жирных кислот в судаке, где олеиновая и пальмитиновая кислоты также были представлены в качестве доминирующих жирных кислот в выращиваемом и диком филе. судак [13,57,58].

Содержание ПНЖК в филе судака состояло в основном из МК, ДГК и эйкозапентаеновой кислоты (20:5n3; ЭПК). Они были значительно выше у филе S и C, чем у филе FM.

Период кормления в настоящем исследовании был в два раза дольше, чем в предыдущем исследовании, описанном Schafberg et al.[13]. Следовательно, нынешние особи также были крупнее и тяжелее. Это связано с более высоким общим содержанием липидов в рыбе. Что касается биомассы, настоящее исследование показало более высокое содержание ПНЖК и более низкое содержание МНЖК (мононенасыщенных ЖК), чем описано Schafberg et al. [13].

Таким образом, изменения в рецептуре ФМ привели к хорошему обогащению ПНЖК в филе судака в настоящем исследовании. Накопление пальмитолеиновой кислоты (16:1n7) в филе FM (6,36% жира -1) было значительно выше, чем в филе группы S (0.91% жира -1 ) или С (0,77% жира -1 ). Пальмитолеиновая кислота метаболизируется из пальмитиновой кислоты по пути стеароил-КоА-десатуразы [13, 59, 60, 61, 62], этому пути, по-видимому, способствует прием диеты FM.

Шафберг и др. [31] показали, что стандартный корм имел значительно более высокое содержание пальмитиновой (2,22 г ЖК на 100 г -1 ) и пальмитолеиновой кислоты (0,30 г ЖК на 100 г -1 ), чем рацион FM (пальмитиновая кислота 1,58 г ЖК100). г -1 , пальмитолеиновая кислота 0.03 г FA 100 г -1 ) и контрольный корм (пальмитиновая кислота 1,88 г FA 100 г -1 , пальмитолеиновая кислота 0,03 г FA 100 г -1 ). Однако, когда содержание этих жирных кислот было соотнесено с общим содержанием липидов, не было никаких существенных различий между S (пальмитиновая кислота 23,6% жира -1, пальмитолеиновая кислота 0,91% жира -1) и FM-диетами (пальмитиновая кислота 29,1% жира -1, пальмитолеиновой кислоты 6,36% жира -1), тогда как диета С показала несколько более низкое содержание этих кислот (пальмитиновая кислота 23. 1% жира -1, пальмитолеиновая кислота 0,77% жира -1). Следовательно, значительно более высокое содержание пальмитолеиновой кислоты в жире филе FM должно быть обусловлено содержанием микроорганизмов в корме FM. Таким образом, реакции между стеароил-КоА-десатуразой и пальмитиновой кислотой с образованием пальмитолеиновой кислоты, по-видимому, способствует содержание микроорганизмов в рационе.

Филе FM имело значительно более низкое содержание ДГК, ЭПК и арахидоновой кислоты, чем филе групп S и C, хотя в рационе FM содержание ДГК и ЭПК было выше, чем в рационе S [31].FM-диета, по-видимому, влияет на метаболизм жирных кислот у судака, поскольку удлинение жирных кислот уменьшается. Как пресноводная рыба, судак склонен метаболизировать ЛК и α-линоленовую кислоту (АЛК). Таким образом, в начале каскада элонгации LA и ALA являются конкурентными субстратами для существующих десатураз и элонгаз у рыб, чтобы сформировать ПНЖК с очень длинной цепью и встроить их в липиды и мембраны [60,61,62].

Значительно более низкое содержание DHA в филе FM указывает на то, что более длительное испытание кормления не обязательно является подходом для лучшего накопления.Еще одним важным моментом низкого содержания ДГК является то, что рационы (FM, S и C) не были оптимизированы или адаптированы для судака. Это исследование было попыткой выяснить, примет ли судак новую диету или вообще откажется от нее. Аналогично, как описано Schafberg et al. (2020), в филе радужной форели содержание ДГК было выше, чем в филе судака [31]. Оба вида получали одинаковые корма, поэтому низкое содержание ДГК должно быть результатом их видового метаболизма.

Обсуждение профиля ЖК в контексте других исследований судака следует вести осторожно. «Физиология» и биосинтез специфических метаболитов, таких как жирные кислоты, зависят прежде всего от вида и дизайна исследования (возраст, размер, пол, время года, морская или пресноводная рыба). Кроме того, географическое положение и температура воды для рыб имеют решающее значение для метаболизма ЖК [58].

3.1.2. Радужная форель

Инновационная кормовая смесь на основе микроорганизмов в настоящем исследовании была специально оптимизирована для популяции радужной форели на основе предыдущих результатов [31].Кроме того, для сравнения хищных и нехищных видов был выбран судак. Было высказано предположение, что нехищная радужная форель легче справится с этой новой кормовой смесью для рыб.

показывает параметры роста и конверсии корма. Рыбы не показали каких-либо существенных различий в исходном весе (139 г ± 33 г), но в конце исследования ФМ привел к значительно более низкому весу (410 г), чем рационы двух других групп. Такая же тенденция наблюдалась в отношении прироста веса, веса филе, общей длины, веса печени, k-фактора, SGR, а также кишечного жира, IFSI, HSI и FCR.Рыбы не показали существенных различий в зависимости от рациона. В настоящем исследовании было заменено только 50% рыбной муки и масла. Предыдущие исследования показали, что корма на растительной основе демонстрируют снижение показателей роста (особенно низкий привес и высокий FCR) при замене больших порций рыбной муки или жира [45,63,64,65,66]. В настоящем исследовании контрольная диета состояла примерно на 50% из рыбной муки и жира. Для FM была заменена половина этих ингредиентов. В настоящем исследовании FCR был на одном уровне для всех групп кормления, тогда как прирост веса значительно различался.Этот результат также был показан в предыдущих исследованиях [63,64]. Таким образом, замещающая часть является решающим критерием. Цель настоящего исследования состояла в том, чтобы создать корм, обеспечивающий рост, аналогичный имеющимся в продаже кормам (с традиционными порциями рыбной муки и жира). SGR радужной форели, получавшей FM, был несколько ниже, чем у рыб групп C и S, но разница не была достоверной.

Сеголетки набирают больше веса за более короткое время, чем взрослые особи, из-за стадии их развития.В настоящем исследовании более старые рыбы использовались в течение сравнительно более длительного периода исследования и показали, как и ожидалось, меньший прирост веса. Однако тенденция та же; отношение FM к C было 0,73 в упомянутом ранее исследовании [30], тогда как в настоящем исследовании отношение FM к C было 0,67 и 0,60 для FM к S.

Выживаемость была немного ниже по сравнению с предыдущим исследование, описанное Schafberg et al. [13]. Показатели роста и конверсия корма подтвердили, что FM хорошо адаптировался для радужной форели, но все еще имеет потенциал с точки зрения прироста веса и конечного товарного веса.В центре внимания должна быть добавленная стоимость, а устойчивые методы также должны быть приоритетом, как и в других устойчивых сельскохозяйственных угодьях.

Через 16 недель цвет печени рыб кормовой группы С был в целом темнее, чем у рыб S и FM (). Не было различий в уровнях покраснения, но уровни желтизны печени S и FM были выше, чем у печени C. Кормовая смесь печени C с высоким значением dE привела к изменению цвета с желтого на синий. Разница в цвете dE неделя4 возникла в результате различных изменений: уровень желтизны в печени S увеличился, а в печени C и FM уменьшился.Уменьшение светлоты цвета печени также способствовало увеличению значения dE печени C. По цвету печени можно сделать выводы о накоплении жира. Результаты показывают, что диета FM привела к тому, что люди были такими же здоровыми, как и люди из группы стандартной диеты, поскольку кормовая смесь dE печени, получавшей S, была относительно низкой, а кормовая смесь dE была примерно вдвое меньше, чем у рыб, которых кормили рыбой. с кормом C. Это означает, что печень FM-рыб больше похожа на печень S-рыб, чем на печень C-рыб.

Шафберг и др. (2020) уже показали результаты показателей питательности филе () и кормов соответственно [31]. Сухая масса, зольность и содержание белка в филе не показали существенных различий [31]. Существовали значительные различия в содержании жира (ЖМ: 7,5%; С: 7,8%; С: 8,2%) и в содержании некоторых ПНЖК в филе, точнее АЛК, ЭПК и ДГК (31). Четыре преобладающих жирных кислоты (в порядке убывания) в филе: пальмитиновая кислота, LA, стеариновая кислота и олеиновая кислота.Эти жирные кислоты также преобладали в кормах, как описано выше (3.1.1.) [31].

Далее авторы описали цвет лиофилизированного филе [31], тогда как настоящее исследование было сосредоточено на цвете свежего филе. Цвет филе свежей рыбы FM () значительно отличался (L = 41) и не был таким ярким, как цвет свежей рыбы, полученной из рационов S (L = 43) или C (L = 43). Однако свежие филе FM имели самый высокий уровень покраснения и желтизны. Эти различия также объясняют высокие значения dE.Такая же тенденция наблюдалась и в лиофилизированных образцах [31]. Свежие и лиофилизированные образцы филе S и C были немного ярче, чем филе FM, при этом яркость свежих филе (L = 42) составляла примерно половину от лиофилизированных образцов (L = 72). Уровень покраснения свежих филе С (а = 1,5) и S (а = 2,0) был значительно ниже, чем у филе FM (а = 2,6), тогда как лиофилизированные филе С (а = 1,8) показали самый высокий уровень покраснения. (FM lyo : 1,1; S lyo : 0.2). Более того, как и ожидалось, уровень желтизны лиофилизированных образцов был значительно выше (b = 20,2), чем у свежих образцов (b = 3,5). Различия в уровне желтизны можно неожиданно более отчетливо наблюдать у свежего филе (C: 0,63; FM: 6,94; S: 3,01). Как уже было описано для судака, более низкий уровень красноты означает сдвиг цвета в сторону зеленого цвета. Причиной такого «зеленого сдвига» является накопление хлорофиллов из ингредиента Arthrospira sp., тогда как более высокий уровень желтизны возникает из-за повышенного содержания каротиноидов [13,20,31]. Эти результаты подтверждают результаты предыдущих исследований, в которых рыбная мука была заменена Spirulina platensis . Теймури и др. (2016) показали, что все филе, которых кормили спирулиной, имели значительно более низкую яркость, более высокий уровень покраснения и более высокий уровень желтизны, чем контрольные филе [20]. Более того, увеличение количества спирулины в кормах коррелировало с увеличением уровня покраснения и желтизны и уменьшением яркости [20].Следовательно, изменение цвета филе FM в настоящем исследовании можно отнести к содержанию спирулины в корме.

Границы | Как судак Sander lucioperca реагирует на диетическую муку из насекомых Hermetia illucens? Исследование кишечной микробиоты, гистоморфологии и антиоксидантных биомаркеров

Введение

Аквакультура является крупнейшим в мире потребителем рыбной муки, на долю которой приходится 68–73% (Shepherd and Jackson, 2013; Tacon and Metian, 2015). Рыбная мука в основном производится в результате морского промысла (70% в 2018 г.) (ФАО, 2020a), который вышел на плато с 2000-х годов (Shepherd and Jackson, 2013), и, по прогнозам, экологические пределы запасов будут достигнуты к 2037 г. (Фрёлих и др., 2018а). Таким образом, нынешний самый быстрый рост аквакультуры в секторах производства продуктов питания (FAO, 2020a) и непрерывная тенденция роста требуют разработки новых ингредиентов кормов для аквакультуры. До недавнего времени наземные культуры использовались в кормах для аквакультур чаще, чем другие альтернативы (Tacon et al., 2011; Tacon and Metian, 2015), и к 2050 году использование этих кормов в аквакультуре вырастет в два раза по сравнению с текущим уровнем в бизнесе. по обычному сценарию, достигнув 91 млн тонн (Froehlich et al., 2018b).Тем не менее, корма на растительной основе для водных животных вызывают опасения относительно их питательных свойств и последствий для окружающей среды. Несбалансированный профиль незаменимых аминокислот, низкая вкусовая привлекательность и присутствие антипитательных веществ могут препятствовать их включению в аквакорма (Gatlin et al. , 2007). Кроме того, расширение и интенсификация производства наземных культур приведет к огромным экологическим нагрузкам, связанным с изменением климата, утратой биоразнообразия и увеличением потребности в пахотных землях и воде.Среди таких нагрузок землепользование считается той, которая влечет за собой наибольшую нагрузку на планету (Foley et al., 2005, 2011; Boissy et al., 2011). Помимо наземных растительных ингредиентов, побочные продукты рыболовства и мука из насекомых продемонстрировали наибольший потенциал для добавления белка в корма для аквакультуры в ближайшие годы (Hua et al., 2019; Gasco et al., 2020a). Хотя к 2030 году примерно 34% мирового производства рыбной муки будет производиться из побочных рыбных продуктов (FAO, 2020a), этот потенциальный источник белка все равно не сможет удовлетворить прогнозируемый спрос на аквакорма к 2050 году (Froehlich et al., 2018а). Эффективность муки из насекомых в качестве будущего ингредиента корма для аквакультуры уже определена, особенно в отношении осуществимости затрат, масштабируемости и технологии обработки (Hua et al. , 2019). Во всем мире производство насекомых растет и к 2025 году достигнет приблизительно 1,2 млн тонн, а к 2023 году станет конкурентоспособным по цене с рыбной мукой (Hua et al., 2019; Gasco et al., 2020a). Кроме того, развитие производственных мощностей и методов обработки поможет улучшить экологические характеристики муки из насекомых как устойчивого ингредиента корма для аквакультуры (van Huis and Oonincx, 2017).Использование семи видов насекомых (двух мух, двух мучных червей и трех видов сверчков) в рационах рыб было разрешено Европейской комиссией (Регламент № 2017/893). Среди этих видов наибольший исследовательский интерес вызывает черная львиная муха ( Hemertia illucens ), принадлежащая к отряду двукрылых (Hua, 2021). Мука из личинок Hemertia illucens обладает важным питательным профилем, особенно профилем аминокислот, который близок к рыбной муке (Nogales-Mérida et al., 2019). Что касается воздействия на окружающую среду, то производство H. illucens , если оно получено с использованием неценных субстратов, требует значительно меньшего использования пахотных земель и воды, чем производство соевого шрота (Smetana et al. , 2019; Gasco et al., 2020b). Более того, корма H. illucens , содержащие муку, показали меньшее воздействие на окружающую среду, связанное с истощением абиотических организмов, потенциалом подкисления, потенциалом эвтрофикации, изменением климата, потенциалом токсичности для человека и потенциалом экологической токсичности для арктического гольца ( Salvelinus alpinus ) (Smárason). и другие., 2017) и меньшее потребление воды европейским окунем ( Perca fluviatilis ) (Stejskal et al., 2020), чем рационы, не содержащие насекомых.

Замена рыбной муки на муку H. illucens в аквакормах для крупнейших потребителей рыбной муки уже была исследована, и были достигнуты уровни замены, которые не задерживают рост продукции протестированных видов, включая белоногих креветок ( Litopenaeus vannamei ) (60% правдоподобная замена) (Cummins et al., 2017), атлантический лосось ( Salmon salar ) (85–100%) (Lock et al., 2016; Belghit et al., 2018, 2019), европейский морской окунь ( Dicentrarchus labrax ) (45 %) (Magalhães et al. , 2017), баррамунди ( Lates calcarifer ) (50 %) (Katya et al., 2017) и радужная форель ( Oncorhynchus mykiss ) (45%) (Sealey et al., 2011; Rena et al., 2017; Dumas et al., 2018). Кроме того, было доказано, что диетическая мука H. illucens модулирует разнообразие и богатство бактерий, которые играют важную роль в питании, иммунологии и состоянии здоровья рыб, таких как радужная форель ( O.mykiss ) (Bruni et al., 2018; Huyben et al., 2019; Rimoldi et al., 2019; Terova et al., 2019; Rimoldi et al., 2021) и рыбки данио ( Danio rerio ) (Zarantoniello и др., 2020b). Подтверждено, что польза рыбы, питающейся насекомыми, для здоровья кишечника подходит для видов, которые естественным образом питаются насекомыми (Antonopoulou et al., 2019; Gasco et al., 2020c).

Судак ( Sander lucioperca ) — один из основных видов окуневых, привлекший большое внимание в аквакультуре (Schulz et al., 2006). Производство судака в аквакультуре достигло 1557 тонн в 2018 году, что вдвое больше, чем в 2009 году (750 тонн) (FAO, 2020b), и в основном было создано в системах интенсивной рециркуляции (Dalsgaard et al. , 2013). Однако до сих пор производители кормов уделяли мало внимания судаку и другим окуневым рыбам (Bochert, 2020). Хотя некоторые коммерческие аквакорма для окуневых стали доступны, на практике более широко используются корма, предназначенные для лососевых (Stejskal et al., 2016).Поскольку европейская аквакультура судака движется к устоявшемуся сектору пресноводной аквакультуры (Policar et al., 2019), необходимо будет разработать подходящие и устойчивые корма для вышеупомянутого сектора. Сообщалось, что потребность в пищевом белке составляет не менее 43% для надлежащих показателей роста и использования корма сеголетками судака (Nyina-Wamwiza et al., 2005). В природе водные насекомые – личинки озерных мух ( Chironomidae ) (отряд Diptera) играют важную роль в качестве источников пищи для ранних стадий онтогенеза судака (Vinni et al., 2009; Гинтер и др., 2011; Кашинская и др., 2018; Хуусконен и др., 2019). Таким образом, было высказано предположение, что использование муки из личинок H. illuces подходит для аквакультуры судака. Целью настоящего исследования является изучение влияния диетической обезжиренной черной львинки ( H. illucens ) (HI) на рацион молоди судака ( S. lucioperca ) на кишечную микробиоту, гистоморфологию и активность окислительных ферментов. Результаты могут предоставить информацию при выборе альтернативного ингредиента аквакорма для зарождающейся индустрии выращивания окуневых в Европе.

Материалы и методы

Заявление об этике

Экспериментальные процедуры проводились в соответствии с Директивой Европейского сообщества (№ 2010/63/ЕС) о защите животных, используемых в научных целях, и были одобрены Министерством здравоохранения Чехии (MSMT-6744/2018-2).

Экспериментальные рационы, помещения для выращивания и процедуры кормления

Испытание на кормление проводилось в мокрой лаборатории Факультета рыболовства и охраны вод Южночешского университета в Ческе-Будейовицах, Чешская Республика. Обезжиренный HI получали из коммерческого источника (Hermetia Geschäftsführungs GmbH, Baruth/Mark, Германия). Было составлено четыре изопротеиновых (приблизительно 45% сырого протеина) и изолипипидных (приблизительно 18% эфирного экстракта) рационов, включающих один рацион на основе рыбной муки (CO) и три других рациона, где HI был включен в количестве 9% (HI9), 18% ( HI18) и 36% (HI36) для замены рыбной муки при содержании 25, 50 и 100% соответственно (таблица 1). Экспериментальные рационы были приготовлены коммерческим производителем кормов (Exot Hobby s.r.o., Черна в Пошумави, Чехия) с использованием двухшнекового экструдера (Saibainuo, Китай). Химический состав ГИ и экспериментальных рационов, а также состав жирных кислот (ЖК) опытных рационов приведены в табл. 1, 2 соответственно.

Таблица 1. Ингредиенты и примерный состав экспериментальных рационов.

Таблица 2. Состав жирных кислот (ЖК) (в мг/г общего количества ЖК) экспериментальных рационов.

Эксперимент по кормлению проводился в рециркуляционной системе аквакультуры (общий объем 11400 л), состоящей из пятнадцати 250-литровых круглых конических пластиковых резервуаров (черные стенки, белое дно), соединенных с механическим барабанным фильтром (АЕМ 15, АЕМ-Продукты В.OF, Лиенден, Нидерланды), отстойники (общий объем 2600 л), ряд секций фильтрации (Bioakvacit PPI10) и биофильтр с подвижным слоем (объем 4700 л, среда BT10 Ratz Aqua & Polymer Technik, Remscheid, Германия) , в контролируемых условиях выращивания, при температуре воды 23,1 ± 1,0°C, фотопериоде 12 часов света – 12 часов темноты, освещенности 20–35 люкс, насыщении кислородом 98,4 ± 15,2% и рН 6,98 ± 0,28. Кроме того, концентрация нитрита-N, нитрата-N и концентрация аммиака-N поддерживались на уровне 0.42 ± 0,24, 48,8 ± 21,3 и 1,89 ± 0,58 мг/л соответственно.

Приготовленными рационами кормили трехкратные группы молоди судака (исходная масса тела 68,7 ± 7,1 г, по 50 особей в аквариуме) в течение 84 дней. В ходе испытания был принят комбинированный протокол кормления, состоящий из четырех приемов пищи в день в 07:00, 09:00, 11:00, 13:00 с помощью автоматических кормушек (EHEIM Twins, Deizisau, Germany) и кормления с одной руки в 15:00. Любые несъеденные корма собирали сифонированием и сушили в печи для точного расчета потребления корма.

Процедуры отбора проб

Биометрия рыб

В начале и в конце кормления рыб взвешивали по отдельности для расчета привеса (WG) и коэффициента конверсии корма (FCR):

WG (г) = конечная масса тела – исходная масса тела

FCR = общее количество поставляемого корма (г сухого вещества)/WG

Антиоксидантный фермент и гистоморфологический анализ

Через 84 дня эксперимента было случайным образом отобрано 45 рыб (3 особи/танк) через 24 часа лишения корма, и они были подвергнуты эвтаназии с помощью передозировки анестезии (MS222, 125 мг/л).

Вскрытая печень и кишечник от 15 рыб/группа хранились при температуре -80°C для дальнейшего анализа антиоксидантных ферментов. Такое же количество образцов, взятых еще у 15 рыб/группу, фиксировали путем погружения в 10% забуференный раствор формалина для гистоморфологического анализа.

Кишечная микробиота

В конце эксперимента из каждого аквариума случайным образом отобрали по три рыбы и подвергли эвтаназии с помощью передозировки анестезии (MS222, 125 мг/л). Чтобы убедиться, что вся отобранная рыба переваривалась по всему кишечному тракту, рыбу лишали корма за 12 ч до времени отбора проб.Внешнюю часть рыбы протирали 70% этанолом перед вскрытием брюшной полости, весь кишечник каждой рыбы удаляли из брюшной полости, а переваренную массу от проксимального к дистальному отделу кишечника осторожно выдавливали в асептический сосуд Eppendorf объемом 1,5 мл и немедленно хранили при -80°C для дальнейшего использования. анализ.

Аналитические методы

Химический состав рациона

Анализ обезжиренной муки HI и экспериментальных рационов на сухое вещество, сырой белок, сырой липид, золу и жирные кислоты (ЖК) проводили, как описано в другом месте (Tran et al. , 2021). Полную энергию определяли с помощью калориметрической бомбы (IKA C7000, Штуфен, Германия).

Окислительный стресс в печени и кишечнике

Биомаркеры окислительного стресса оценивали в печени и кишечнике каждого образца рыбы с помощью спектрофотометрического анализа (спектрофотометр Varian Cary, Санта-Клара, Калифорния, США), как ранее описано Elia et al. (2018). Вкратце, активность супероксиддисмутазы (СОД) измеряли в 50 мМ Na 2 CO 3 , pH 10, 0.1 мМ ЭДТА, 500 мМ цитохрома С и 1 мМ гипоксантина и ксантиноксидазы. Снижение цитохрома С системой ксантин/гипоксантин измеряли по стандартной кривой единиц СОД при 550 нм. Активность каталазы (CAT) измеряли как уменьшение поглощения при 240 нм из-за потребления H 2 O 2 . Анализ проводили в буфере NaH 2 PO 4 + Na 2 HPO 4 (100 мМ, pH 7) и 12 мМ H 2 O 2 .Активность глутатионпероксидазы (SeGPx) измеряли, следуя за окислением NADPH при 340 нм и используя 0,6 мМ H 2 O 2 или 0,8 мМ гидропероксидов кумола (tot GPx) в качестве субстратов. Глутатион-S-трансферазу (GST) измеряли при 340 нм с использованием в качестве субстрата 1-хлор-2,4-динитробензола (CDNB).

Гистоморфологический анализ кишечника и печени

Образцы передней кишки вырезали и промывали 0,9% солевым раствором для удаления всего содержимого.Собранные образцы фиксировали в 10% забуференном растворе формалина, обычно заливали в парафиновые блоки, делали срезы толщиной 5 мкм, помещали на предметные стекла и окрашивали гематоксилином и эозином (HE). Один слайд на сегмент кишечника исследовали с помощью световой микроскопии и снимали с помощью цифровой камеры Nikon DS-Fi1, соединенной с микроскопом Zeiss Axiophot, с использованием 2,5-кратного объектива. Для захвата изображений использовалось программное обеспечение NIS-Elements F.

Морфометрический анализ проводили с использованием программного обеспечения Image ® -Pro Plus на десяти хорошо ориентированных и интактных ворсинках.Оценивались морфометрические показатели: высота ворсинок (от верхушки ворсинок до подслизистой основы) и ширина ворсинок (по основанию ворсинок, но не включая щеточную кайму).

Наблюдаемые гистопатологические данные оценивались во всех органах с использованием следующей полуколичественной системы оценки: отсутствует (оценка = 0), легкая (оценка = 1), умеренная (оценка = 2) и тяжелая (оценка = 3) . Гистопатологические данные в кишечнике оценивались отдельно для каждого сегмента слизистой оболочки (воспалительные инфильтраты) и подслизистой оболочки [воспалительные инфильтраты и активация кишечной лимфоидной ткани (GALT)].Общий балл каждого сегмента кишечника был получен путем добавления к баллам слизистой оболочки и подслизистой оболочки. Все слайды оценивались вслепую двумя независимыми наблюдателями, а любые несогласующиеся случаи подвергались повторному исследованию с использованием многоголового микроскопа до тех пор, пока не был достигнут единодушный консенсус.

Анализ микробиома

Экстракция ДНК и секвенирование мишени ампликона 16S рРНК

Из содержимого кишечника экстрагировали

нуклеиновых кислот (500 мг в качестве исходных материалов). Тотальную ДНК из образцов экстрагировали с использованием набора RNeasy Power Microbiome KIT (Qiagen, Милан, Италия) в соответствии с инструкциями производителя.Добавляли один микролитр РНКазы (Illumina Inc, Сан-Диего, Калифорния, США) для расщепления РНК в образцах ДНК на период инкубации 1 час при 37°С. ДНК количественно определяли с помощью Qubit ds и стандартизировали до 5 нг/мкл.

ДНК, выделенных непосредственно из образцов пищеварительного тракта, использовали для оценки микробиоты путем амплификации области V3–V4 гена 16S рРНК (Klindworth et al., 2012). Продукты ПЦР очищали в соответствии со стандартной метагеномной процедурой Illumina (Illumina Inc, Сан-Диего, Калифорния, США).Секвенирование выполняли с помощью прибора MiSeq Illumina с химией V3, и в соответствии с инструкциями производителя были созданы считывания парных концов длиной 250 п.н.

Статистический анализ

Все данные об активности антиоксидантных ферментов были проверены на однородность дисперсии с использованием теста Кокрана, Хартли, Бартлетта. Влияние диеты на окислительный стресс в различных органах анализировали отдельно с помощью однофакторного дисперсионного анализа с последующим тестом Тьюки. Статистический анализ был выполнен с использованием STATISTICA 12.0, где P -значение <0,05 в качестве значимой разницы.

Необработанные считывания микробиоты были сначала объединены после секвенирования с использованием программного обеспечения FLASH (Magoč and Salzberg, 2011) с параметрами по умолчанию и отфильтрованы с использованием программного обеспечения QIIME 1.9.0 и конвейера, как недавно описано (Biasato et al., 2018). ). Вкратце, более короткие чтения (<300 п.н.) отбрасывали с использованием Prinseq. Программное обеспечение USEARCH (версия 8.1) использовалось для фильтрации химер, а операционные таксономические единицы (OTU) были выбраны с порогом сходства 97% с использованием алгоритмов UCLUST.Таксономия была назначена против 16S рРНК от Greengenes. Таблица OTU была сокращена до 10 144 последовательностей на образец. В таблице OTU отображается максимальное достигнутое разрешение таксономии. Когда присвоение таксономии не могло достичь уровня рода, отображались семейства или типы. Программное обеспечение R использовалось для расчета альфа-разнообразия, в то время как взвешенная и невзвешенная матрица расстояний UniFrac и таблица OTU использовались для поиска различий между образцами с использованием статистического теста перестановочного многомерного дисперсионного анализа (Anosim) и анализа подобия (Adonis) с учетом того же работать в среде R.Парный критерий Уилкоксона использовали для определения любых существенных различий в альфа-разнообразии или обилии OTU в зависимости от пищевой муки из насекомых. Анализ главных компонентов (PCA) был построен с использованием функции dudi.pca через пакет made4 среды R. Переменные с ненормальным распределением были представлены в виде медианных значений (межквартильный размах, IR), а прямоугольные диаграммы представляли межквартильный размах между первым и третьим квартилями, при этом планки погрешностей показывали самое низкое и самое высокое значение. Парные тесты Крускала-Уоллиса использовались для выявления любых существенных различий в обилии микробных таксонов в зависимости от диетического лечения. P -значения были скорректированы для множественного тестирования, и частота ложных открытий (FDR) <0,05 считалась значимой. Данные, полученные в результате секвенирования, были депонированы в архиве NCBI Sequence Read Archive (SRA) и доступны под номером доступа BioProject PRJNA704237.

Программное обеспечение GraphPad Prism ® (версия 8.0) использовалось для проведения статистического анализа, гистоморфометрических исследований.Тест Шапиро-Уилка использовался для проверки нормальности распределения данных перед статистическим анализом. Данные описывались средним значением и стандартным отклонением (SD) или медианой и IR в зависимости от распределения данных. Для сравнения морфологии кишечника и гистопатологии органов в группах с разным питанием был проведен двумерный анализ с помощью однофакторного анализа ANOVA или тестов Краскела-Уоллиса. P – значения <0,05 считались статистически значимыми.

Результаты

Состав рациона и рост продукции судака

Приготовленные диеты имели аналогичный приблизительный состав, за исключением хитина, который увеличивался с увеличением включения HI (таблица 1).Включение диетического HI значительно изменило профиль ЖК экспериментальных диет. Что касается насыщенных ЖК (НЖК), то лауриновая (С12:0), миристиновая (С14:0) и пальмитиновая кислоты (С16:0) достоверно увеличивались с увеличением включения HI ( P < 0,05). Было обнаружено, что содержание мононенасыщенных ЖК (МНЖК), в которых преобладает пальмитолеиновая кислота (С16:1), С18:1n9 и С18:1n7, значительно выше по сравнению с h46 ( P <0,05), в то время как МНЖК в H9 и h28 остаются сопоставимыми. ( P > 0.05). Повышение уровня включения HI значительно снижало полиненасыщенные ЖК (ПНЖК) ( P <0,05). Аналогичная тенденция наблюдалась для ЭПК, ДГК, линолевой кислоты, альфа-линоленовой кислоты ( P < 0,05) (табл. 2).

В конце кормления WG у рыб, получавших HI36 (62,8, среднее значение), был значительно ниже, чем в контрольной группе (85,3 г) ( P < 0,05), тогда как у судака, получавшего HI9 (84,8 г) и HI18 ( 83,2 г) не показал существенной разницы с CO ( P > 0.05). FCR группы CO (1,27) был сопоставим с таковым для HI9 (1,28) и HI18 (1,29) ( P > 0,05), но значительно ниже, чем HI36 (1,81) ( P < 0,05) (табл. 3).

Таблица 3. Показатели роста и гистопатологические признаки в зависимости от диетических групп.

Окислительный стресс в печени и кишечнике

Результаты окислительных биомаркеров, SOD, CAT, SeGPx и GST, в печени и кишечнике судака, получавшего экспериментальный рацион, представлены на рисунке 1.Диетический ГИ не изменял активности СОД ни в печени, ни в кишечнике, активности КАТ в печени, активности SeGPx в кишечнике или активности GST в печени судака ( P > 0,05 ). Не наблюдалось значительных различий между экспериментальными группами ( P > 0,05 ) для печени в отношении активности CAT, тогда как этот биомаркер был значительно ниже в HI18 и HI36, чем в HI9 ( P <0,05), но оставался сходным с СО ( P > 0. 05) в кишечнике. Даже если они не отличались от группы CO, среди рыб, получавших корм, содержащий HI, HI9 давал самую высокую активность SeGPx в печени ( P <0,05), тогда как самая низкая активность была обнаружена в группе HI36 ( P <0,05). Значительное увеличение концентрации GST наблюдалось в кишечнике судака, получавшего HI-содержащие рационы, по сравнению с CO ( P < 0,05). Из различных групп, питавшихся насекомыми, HI9 показал более высокий GST, чем HI18 ( P <0,05), в то время как HI36 оставался промежуточным положением.

Рисунок 1. Окислительные биомаркеры в печени и кишечнике судака ( Sander lucioperca ), получавшего экспериментальный рацион. Значения представлены как среднее значение ± стандартное отклонение. Средние значения с разными буквами значительно отличаются ( P < 0,05) друг от друга.

Гистоморфология

Данные, касающиеся гистопатологической оценки, приведены в таблице 3. Наблюдались лишь небольшие различия в морфометрии и гистопатологии кишечника среди групп, получавших диету.Хотя существенной разницы не было, можно было наблюдать тенденцию ( P = 0,065), когда в группе HI36 регистрировались более широкие ворсинки, чем в других группах. Таким образом, включение ГИ в рацион не вызывало существенных морфологических изменений в кишечнике судака, что свидетельствует об отсутствии отрицательного влияния такого ГИ в рационе на физиологическое развитие кишечника.

Многоочаговая или диффузная вакуолярная дегенерация печени от легкой до тяжелой степени была зарегистрирована во всех группах лечения, и было обнаружено, что она была выше в группе CO и HI9, чем в группе HI18 и HI36.Диетическое ГИ не выявило каких-либо признаков воспаления печени судака (таблица 3 и рисунок 2).

Рис. 2. Гистопатологическое изменение печени судака, рассматриваемого в настоящем исследовании. (A) Нормальная печень, окраска гематоксилином и эозином (H-e), 40-кратное увеличение, для диеты HI36. (B) Легкая и многоочаговая вакуолярная дегенерация (степень 1), H-e, 40-кратное увеличение, для диеты HI18. (C) Умеренная и многоочаговая вакуолярная дегенерация (степень 2), H-e, 40-кратное увеличение, для диеты HI9. (D) Тяжелая и диффузная вакуолярная дегенерация (степень 3), H-e, 40-кратное увеличение, для диеты с CO.

Микробиота

Общее количество высококачественных последовательностей парных концов, полученных в результате секвенирования 16S рРНК, достигло 1 916 822 необработанных прочтений. После фильтрации 1 295 693 считывания прошли фильтры, примененные QIIME, со средним значением 37,559 ± 15,565 считываний/выборку и средней длиной последовательности 443 п.н. Анализ разрежения и покрытие Гуда, выраженное в виде среднего процента (97%), также показали удовлетворительное покрытие всех образцов.

Результат анализа OTU показал, что не было существенной разницы в индексе Шеннона ( P > 0,05) среди диетических групп, в то время как альфа-разнообразие кишечных бактерий, связанное с Chao1 и наблюдаемыми OTU, у рыб, получавших HI18, значительно увеличилось относительно к диете CO ( P <0,05) (рис. 3).

Рисунок 3. Диаграммы, показывающие индекс разрежения альфа-разнообразия в экспериментальных рационах. Прямоугольники представляют межквартильный размах (IR) между первым и третьим квартилями, а линия внутри прямоугольников представляет медиану.Усы обозначают самые низкие и самые высокие значения в пределах 1,56 IR от первого и третьего квартилей соответственно. Круги представляют выбросы за пределами усов. Различные надстрочные индексы на диаграмме указывают на существенные различия.

Статистические тесты Adonis и Anosim, основанные на взвешенной и невзвешенной матрице расстояний UniFrac с использованием таблицы OTU, показали значительные различия между диетическими группами при введении HI ( P < 0,002). Эти различия также наблюдались, когда участок PCA был создан на уровне рода (рис. 4).Также можно было наблюдать определенную степень разделения по диетическим группам. Микробиота рациона СО была близка к включению муки насекомых 9 %, в то время как микробиота рыб, получавших 18 и 36 % HI, была хорошо разделена (рис. 4).

Рисунок 4. Состав микробиоты (графики PCA) в кишечнике судака ( Sander lucioperca ), получавшего экспериментальный рацион.

Доминирующими OTU на уровне типов были Firmicutes (средние значения 45–75%), независимо от диетического HI.Диета окуней, получавших CO, была обогащена Proteobacteria (26%), в то время как Bacteroidetes (7–13%) были преобладающими типами в рационах рыб, которых кормили HI-содержащими диетами. В результате было обнаружено, что Clostridiaceae, Enterococcaceae и Bacillaceae являются преобладающими семействами в группах кормления рыбой. CLASTTRIDIUM , Acetobacter , Cetobacterium , Cetobacterium , PLESIOMONAS , Acetobacter , PeptoStroptoccoccaceae , Бактерии и Ocainobacillus были на уровне рода, самые обильные розы, найденные в кишечнике окуней наше исследование (рис. 5).

Рисунок 5. Относительное количество (%) OTU в кишечнике судака, получавшего экспериментальный рацион на уровне типов (A) , семейства (B) и рода (C) . Были представлены только бактерии с общей численностью ≥ 1% и ≥ 0,5% на уровне типа и семейства/рода соответственно. Бактерии объединялись как «Другие», если их численность была ниже указанной выше.

Диетический HI положительно влиял на относительную численность почти OTU по сравнению с CO (FDR <0.05), за исключением Bacillus , Burkholderia и Sporosarcina , которые доминировали в группе CO (рис. 6).

Рисунок 6. Коробчатые диаграммы, показывающие относительную численность OTU на уровне рода в кишечнике окуня, получавшего экспериментальный рацион. Средние значения с разными буквами значительно отличаются (FDR <0,05) друг от друга.

Обсуждение

Окислительные ферменты

Активные формы кислорода (АФК) являются продуктами процессов аэробного метаболизма, включая супероксид, перекись водорода и перекиси липидов (Buetler et al. , 2004). Избыток соединений АФК вызывает повреждение клеток и тканей (Rosa et al., 2008). Баланс продукции АФК обеспечивает нормальную физическую функцию любого организма и регулируется антиоксидантными системами (Rosa et al., 2008) с участием двух механизмов: (i) ферментов, удаляющих АФК, включая СОД, КАТ и SeGPx; и (ii) антиоксидантные соединения, т. е. аскорбат, глутатион, удаляющие свободные радикалы (Passi et al., 2002). Было документально подтверждено, что активность антиоксидантных ферментов у судака является тканеспецифичной, а печень является наиболее чувствительным органом к манипуляциям с рационом в условиях рециркуляционной системы аквакультуры (Policar et al., 2016). Однако известно, что в случае детоксикации в кишечнике жизненно важную роль играют определенные ферменты, такие как СОД (Tang et al., 2013). Это исследование показывает, что в печени судака диетический HI не изменяет окислительные ферменты SOD, CAT или GST, но значительно снижает активность SeGPx, что согласуется с результатами предыдущего исследования (Elia et al. , 2018), которые провел испытание на радужной форели, получавшей диетическое питание HI. Значительное снижение каталитической эффективности SeGPx в печени судака, получавшего диетический HI, можно объяснить присутствием хитина (Elia et al., 2018). Действительно, повышение уровня включения HI повышало уровень хитина в рационе (таблица 1). Кроме того, снижение активности SeGPx в результате увеличения HI в рационе может быть связано с различными уровнями ПНЖК в рационе (таблица 2), которые очень восприимчивы к окислению. Фактически, Точер и соавт. (2002) сообщили, что высокое содержание ПНЖК в пище увеличивает перекисное окисление липидов в тканях рыб, и, следовательно, активность фермента SeGPx, участвующего в восстановлении перекисей, включая гидроперекиси ЖК и перекись водорода, также будет высокой (Passi et al., 2002).

Настоящее исследование показывает, что активность CAT в кишечнике судака была значительно выше для групп HI9, чем для групп HI18 и HI36. Аналогичное явление было зарегистрировано для активности CAT в кишечнике радужной форели, которую кормили мукой из насекомых ( T. molitor ), где уровень замещения 25% рыбной мукой показал более высокую активность, чем уровень 50% (Henry et al., 2018a). Активность CAT и SeGPx в настоящем исследовании была одинаковой для CO и HI9 и ниже, чем для групп HI18, HI36.Этот результат указывает на то, что существенная замена рыбной муки HI снижает активность антиоксидантных ферментов у судака. Это согласуется с предыдущим открытием, касающимся радужной форели ( O. mykiss ) (Elia et al., 2018). Снижение этих биомаркеров в группах HI18 и HI36 может быть связано с дисбалансом между продукцией АФК и антиоксидантной способностью. Подходящая концентрация антиоксидантов, таких как хитин и другие биологически активные соединения (Ngo and Kim, 2014), может поддерживать активность антиоксидантных ферментов в HI9 по сравнению с другими диетами, содержащими HI (Henry et al., 2018а).

Глутатион-S-трансфераза играет важную роль в удалении свободных радикалов и детоксикации ксенобиотиков (Aksnes and Njaa, 1981; Li et al. , 2010). Повышенная активность глутатион-S-трансферазы в кишечнике, но не в печени, наблюдалась в разных диетических группах в настоящем исследовании (рис. 1), что указывает на то, что некоторые соединения в HI могли стимулировать путь биотрансформации в кишечнике судака, что также было обнаружены в печени тилапии ( Oreochromis niloticus ), питавшейся кормом на основе сверчков (Ogunji et al., 2007). На самом деле корма из насекомых могут содержать вредные вещества, т. е. тяжелые металлы и пестициды (van der Spiegel et al., 2013). Отсутствие изменения активности GST печени после введения HI может быть результатом других факторов, помимо ксенобиотиков (Collier and Varanasi, 1991), или тканеспецифического ответа (Martínez-Alvarez et al., 2005).

Мы также наблюдали численно более высокие окислительные биомаркеры в печени судака, чем в кишечнике (рис. 1), что согласуется с недавними выводами (Policar et al., 2016), сообщая, что печень была одной из наиболее восприимчивых тканей в ответ на искусственное питание и контролируемые условия.

Гистоморфология

Диетический HI в нашем исследовании не вызывал каких-либо морфологических или воспалительных изменений в кишечнике судака, что согласуется с предыдущими исследованиями, проведенными на различных видах рыб, которых кормили диетической мукой из насекомых (Elia et al., 2018; Zarantoniello et al. , 2019; Zarantoniello et al., 2020a). Отсутствие воспаления кишечника и печени может быть связано с противовоспалительными свойствами, регулируемыми содержанием в пище насыщенных жирных кислот, особенно лауриновой кислоты (С12:0) и хитинового компонента (Henry et al., 2018б; Варгас-Абундез и др., 2019 г.; Zarantoniello et al., 2019; Gasco et al., 2020b,c), которые в настоящем исследовании оказались особенно высокими в рационах, содержащих HI и HI. Хотя существенных различий не было (при значении P <0,05), ворсинки были более расширены в группе HI36, чем в других группах (таблица 3), и это было связано с наличием хитина. Хитин мог стимулировать рост толщины ворсинок у тиляпии ( O. niloticus ), вероятно, из-за его вязкости и водоудерживающей способности (Kihara and Sakata, 1997).Хитин также индуцировал выработку короткоцепочечных жирных кислот, таких как ацетат, пропионат и н-бутират, причем н-бутират, в частности, наблюдался в кишечнике тиляпии (Kihara and Sakata, 1997), тем самым улучшая гистоморфологию кишечника рыб. , например, длина и вес ворсинок (Dawood, 2021). Большое количество рода Paenibacillus в пищеварительном тракте рыб, которых кормили HI36 (рис. 6), может действовать как пробиотик для видов водных животных (Midhun et al., 2017; Chen et al., 2019; Amoah et al., 2020), что приводит к улучшению показателей здоровья кишечника, включая гистоморфологию (Dawood, 2021).

В отличие от недавних результатов, в которых сообщалось, что увеличение количества муки из насекомых вызывало более высокую степень вакуолизации печени у рыб (Li et al., 2017; Zarantoniello et al., 2019), настоящее исследование показывает, что кормление судака ≤ 9% HI вызывали более тяжелую дегенерацию печени, чем 18 или 36% (таблица 3), что могло быть связано с ожирением печени. Шульц и др. (2005) сообщили, что низкий уровень пальмитиновой кислоты (C16:0) приводит к более высокому содержанию липидов в печени. В настоящем исследовании значительно более низкий уровень пальмитиновой кислоты в контрольной группе, чем в группах, содержащих HI, может частично объяснить феномен гепатоцеллюлярной вакуолизации. Механизм воздействия пальмитиновой кислоты на ткани печени еще предстоит выяснить. Однако эти ЖК способствуют пролиферации гепатоцитов (Wang et al., 2011) и обладают противовоспалительным и противовирусным действием (Librán-Pérez et al., 2019). С другой стороны, было обнаружено, что высокое содержание диетической лауриновой кислоты (C12:0), высокая степень окисления и низкое отложение в тканях уменьшают накопление липидов в печени пресноводного атлантического лосося (Belghit et al., 2019). Это может объяснить уменьшение жировой ткани печени у судака, которого кормили HI18 и HI36, по сравнению с контрольным рационом и рационом HI9 (таблица 3). Было подтверждено, что две ЖК, линолевая и олеиновая кислоты, вызывают стеатоз печени у морского леща ( Sparus aurata ) (Caballero et al. , 2004). Кроме того, из-за большой молекулярной массы олеиновая кислота может образовывать большие липидные капли при попадании в гепатоциты (Bradbury, 2006). Установлено, что содержание этих ЖК в СО значительно выше, чем в HI18, HI36 (табл. 2), что может свидетельствовать о выраженном стеатозе печени первой группы (табл. 3). Известно, что высокое потребление эйкозапентаеновой кислоты (ЭПК) и докозагексаеновой кислоты (ДГК) является ингибитором накопления липидов в печени морского леща ( S. aurata ) (Caballero et al., 2004).Следовательно, изменение процентного содержания различных ЖК в экспериментальных рационах из-за включения HI может дополнительно объяснить тяжесть дегенерации вакуолизации печени, наблюдаемую у окуней, получавших CO и H9.

Микробиота

Настоящее исследование показывает, что ГИ в рационе повышает показатели микробного биоразнообразия в кишечнике судака по сравнению с рационом, не содержащим насекомых, что согласуется с недавними выводами о радужной форели (Bruni et al. , 2018; Huyben et al., 2019; Римольди и др., 2019; Terova et al., 2019), тем самым способствуя здоровью кишечника и состоянию здоровья хозяина.

В соответствии с предыдущими исследованиями кишечной микробиоты окуневых и пресноводных рыб настоящее исследование показывает, что Firmicutes , Proteobacteria , Bacteroidetes были наиболее доминирующими типами в кишечнике судака, независимо от уровня включения HI ( Ли и др., 2014; Кашинская и др., 2018; Терова и др., 2019).

Наши результаты показывают численность видов Clostridium у рыб, которых кормили HI9 и HI18, что было даже больше, чем у рыб, которых кормили CO и HI36. Представители рода Clostridium являются распространенными эффективными микроорганизмами, используемыми в качестве пробиотиков в аквакультуре (Nayak, 2010a,b). Было показано, что Clostridium butyricum обладает способностью ингибировать патогены у выращиваемых рыб (Pan et al., 2008a,b; Gao et al., 2013), повышает эффективность кормления креветок (Duan et al. , 2017; Li et al. ., 2019), и быть пригодными для использования в качестве пробиотиков в разводимой рыбе (Hai, 2015; Zorriehzahra et al., 2016). Большая распространенность Clostridium и других бактерий, использующих пробиотики, в HI9, таких как родов Lactobacillus и Bacillus , чем в HI36, может объяснить разницу в коэффициенте конверсии корма между этими рационами в настоящем исследовании. Известно, что роды Bacteroides и Clostridium являются основными таксонами, участвующими в производстве жирных кислот и витаминов (Balcázar et al., 2006). Обильное присутствие этих таксонов может частично компенсировать недостаточность питательных веществ в рационах, содержащих HI, и, следовательно, приводит к сравнимой скорости роста среди контроля, рационов HI9 и HI18, однако компенсация может быть неэффективной для группы HI36.

Стоит отметить, что Cetobacterium , наиболее распространенная бактерия в кишечнике природного судака (Кашинская и др. , 2018) и других пресноводных рыб (Larsen et al., 2014), была обнаружена у нашего судака в неволе, получавшего диетическое питание HI.Аналогичные результаты были также обнаружены у радужной форели (Etyemez and Balcázar, 2015), карпа (van Kessel et al., 2011) и гигантской арапаймы (Ramirez et al., 2018), которых кормили коммерческими аквакормами. Кажется уместным, что Cetobacterium входит в число основных бактерий судака.

Мука из насекомых, как правило, является ингредиентом, богатым хитином. Для расщепления и переваривания этого вещества требуются бинарные ферменты, включая хитиназу и β-N-ацетилглюкозаминидазу, а также различные микробактерии, происходящие из пищеварительного тракта рыб и способные продуцировать хитиназу (Ray et al., 2012; Рингё и др., 2012). Среди этих бактерий с разложенным хитином Plesiomonas и рода Bacillus были обнаружены в группах лечения в особенно низкой численности (рис. 4). Это открытие подразумевает, что судак, возможно, не способен разлагать хитин. Ограниченное присутствие бактерий, продуцирующих хитиназу, также наблюдалось у радужной форели (Bruni et al., 2018; Huyben et al., 2019; Rimoldi et al., 2019; Terova et al., 2019), и это может помочь объяснить низкая или отсутствующая усвояемость хитина у этого вида (St-Hilaire et al., 2007; Генри и др., 2015 г.; Ренна и др., 2017; Кайми и др., 2020).

В заключение, HI, скармливаемый в качестве частичной или полной замены рыбной муки, не вызывал какого-либо воспаления печени или кишечника или какой-либо дегенерации кишечника, но демонстрировал признаки тяжелого стеатоза печени у судаков, получавших CO и HI9 групп. Пищевой ГИ способствует антиоксидантной активности ферментов КАТ, ГП и ГСТ, но не СОД, в печени и, в меньшей степени, в кишечнике судака. Включение HI до 18% или 50% заменителя рыбной муки в рационы судака увеличило численность Clostridium , Oceanobacillus, Bacteroides и Faecalibacterium , тогда как преобладающая бактерия, Cetobacterium , была обнаружена в контрольной группе и группах HI36. .В связи с отсутствием воспаления в тканях, эволюцией антиоксидантного фермента и модификацией благоприятной микробиоты, наблюдаемой в настоящем исследовании, можно предположить, что обезжиренный ГИ может оказывать иммунологическое действие на молодь судака. Дальнейшее изучение иммунного ответа и устойчивости к болезням муки из насекомых, питающихся судаком, может помочь изучить эту эффективность.

Заявление о доступности данных

Оригинальные материалы, представленные в исследовании, включены в статью, дальнейшие запросы можно направлять соответствующему автору.

Заявление об этике

Исследование на животных было рассмотрено и одобрено Министерством здравоохранения Чехии (MSMT-6744/2018-2).

Вклад авторов

LG и VS: планирование эксперимента и редактирование рукописи. HT: анализ данных, написание и редактирование рукописи. М.П., ​​М.З. и Т.Г.: написали рукопись. AE, EC, IF, CC и FG: анализ и первый вариант. Все авторы внесли свой вклад в статью и одобрили представленную версию.

Отказ от ответственности автора

Этот вывод отражает только точку зрения авторов, и Европейский Союз не может нести ответственность за любое использование содержащейся здесь информации.

Конфликт интересов

Авторы заявляют, что исследование проводилось при отсутствии каких-либо коммерческих или финансовых отношений, которые могли бы быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.

Примечание издателя

Все претензии, изложенные в этой статье, принадлежат исключительно авторам и не обязательно представляют претензии их дочерних организаций или издателя, редакторов и рецензентов. Любой продукт, который может быть оценен в этой статье, или претензии, которые могут быть сделаны его производителем, не гарантируются и не поддерживаются издателем.

Финансирование

Исследование выполнено при финансовой поддержке Министерства сельского хозяйства Чешской Республики, проект NAZV (QK1810296). Эта исследовательская рукопись JU-IAPW является частью проекта, получившего финансирование от Программы исследований и инноваций Horizon 2020 Европейского Союза в рамках соглашения о гранте № 652831 (AQUAEXCEL 2020 ), идентификационный номер проекта TNA: AE070026.

Ссылки

Акснес А. и Нджаа Л. Р. (1981). Каталаза, глутатионпероксидаза и супероксиддисмутаза у разных видов рыб. Комп. Биохим. Физиол. Б Биохим. Мол. биол. 69, 893–896. дои: 10.1016/0305-0491(81)

-8

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Амоа, К., Хуанг, К.-К., Донг, X.-Х., Тан, Б.-П., Чжан, С., Чи, С.-Ю., и др. (2020). Paenibacillus polymyxa улучшает рост, иммунную и антиоксидантную активность, здоровье кишечника и устойчивость к болезням у Litopenaeus vannamei , инфицированных Vibrio parahaemolyticus. Аквакультура 518:734563. дои: 10.1016/к.аквакультура.2019.734563

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Антонопулу Э., Никули Э., Пикколо Г., Гаско Л., Гай Ф., Чацифотис С. и др. (2019). Изменение состава кишечных бактериальных сообществ после добавления в пищу личинок Tenebrio molitor у трех видов рыб. Аквакультура 503, 628–635. doi: 10.1016/j.aquaculture.2018.12.013

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Балькасар, Х. Л., Блас, И. Д., Руис-Сарсуэла, И., Каннингем, Д., Вендрелл, Д., и Мускис, Дж. Л. (2006). Роль пробиотиков в аквакультуре. Вет. микробиол. 114, 173–186. doi: 10.1016/j.vetmic.2006.01.009

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Белгхит, И., Лиланд, Н.С., Ваагбё, Р., Бьянкароса, И., Пелузио, Н., Ли, Ю., и др. (2018). Возможности рациона на основе насекомых для атлантического лосося ( Salmo salar ). Аквакультура 491, 72–81. doi: 10.1016/j.aquaculture.2018.03.016

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Белгит И., Ваагбо Р., Лок Э. Дж. и Лиланд Н. С. (2019). Рационы на основе насекомых с высоким содержанием лауриновой кислоты снижают содержание липидов в печени пресноводного атлантического лосося. Аквакульт. Нутр. 25, 343–357. doi: 10.1111/anu.12860

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Biasato, I. , Ferrocino, I., Biasibetti, E., Grego, E., Dabbou, S., Sereno, A., et al. (2018). Модуляция кишечной микробиоты, морфологии и состава муцина путем включения в рацион муки из насекомых у цыплят, содержащихся на свободном выгуле. BMC Вет. Рез. 14:383. doi: 10.1186/s12917-018-1690-y

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Бохерт, Р. (2020). Сравнительная производительность, биохимический состав и анализ жирных кислот евразийского окуня ( Perca fluviatilis ) во время выращивания в УЗВ, получавшего различные коммерческие корма. J. Appl. Аквакульт. 2020, 1–15. дои: 10.1080/10454438.2020.1828217

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Буасси, Дж., Обин, Дж., Дрисси, А., ван дер Верф, Х.М.Г., Белл, Г.Дж., и Кошик, С.Дж. (2011). Воздействие растительного рациона лососевых на окружающую среду в кормовых и фермерских масштабах. Аквакультура 321, 61–70. doi: 10.1016/j.aquaculture. 2011.08.033

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Брэдбери, Массачусетс (2006). Липидный обмен и воспаление печени. I. Поглощение жирных кислот печенью: возможная роль в стеатозе. утра. Дж. Физиол. Гастроинтест. Физиол печени. 290, 194–198.doi: 10.1152/jpgi.00413.2005

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Бруни Л., Пасторелли Р., Вити К., Гаско Л. и Паризи Г. (2018). Характеристика кишечных микробных сообществ радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ), которых кормили частично обезжиренной личиночной мукой Hermetia illucens (черная львиная муха) в качестве частичного источника диетического белка. Аквакультура 487, 56–63. doi: 10.1016/j.aquaculture.2018.01.006

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Кабальеро, М.Дж., Искьердо, М.С., Кьорсвик, Э., Фернандес, А.Дж., и Розенлунд, Г. (2004). Гистологические изменения в печени морского леща Sparus aurata L. , вызванные кратковременным или длительным кормлением растительными маслами. Восстановление нормальной морфологии после кормления рыбьим жиром в качестве единственного источника липидов. Дж. Фиш Дис. 27, 531–541. doi: 10.1111/j.1365-2761.2004.00572.x

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Кайми, К., Ренна, М., Лассиана, К., Бональдо, А., Gariglio, M., Meneguz, M., et al. (2020). Первые сведения о кормлении личинок черной львинки ( Hermetia illucens L.) мальками сибирского осетра ( Acipenser baerii Brandt). Аквакультура 515:734539. doi: 10.1016/j.aquaculture.2019.734539

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Чен С.-В., Лю С.-Х. и Ху С.-Ю. (2019). Диетическое введение пробиотика Paenibacillus ehimensis NPUST1 с бактериоциноподобной активностью улучшает показатели роста и иммунитет против Aeromonas hydrophila и Streptococcus iniae у нильской тиляпии ( Oreochromis niloticus ). Иммунол рыбных моллюсков. 84, 695–703. doi: 10.1016/j.fsi.2018.10.059

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Коллиер, Т.К., и Варанаси, У. (1991). Печеночная активность ферментов, метаболизирующих ксенобиотики, и уровни ксенобиотиков в желчи у камбалы обыкновенной ( Parophrys vetulus ), подверженной воздействию загрязнителей окружающей среды. Арх. Окружающая среда. Контам. Токсикол. 20, 462–473. дои: 10.1007/bf01065834

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Камминс, В.C., Rawles, S.D., Thompson, K.R., Velasquez, A., Kobayashi, Y., Hager, J., et al. (2017). Оценка муки личинок черной львинки ( Hermetia illucens ) в качестве частичной или полной замены муки из морских рыб в практических рационах тихоокеанской белой креветки ( Litopenaeus vannamei ). Аквакультура 473, 337–344. doi: 10.1016/j.aquaculture.2017.02.022

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Далсгаард Дж. , Лунд И., Тораринсдоттир Р., Дренгстиг А., Арвонен, К., и Педерсен, П.Б. (2013). Разведение различных видов в УЗВ в странах Северной Европы: Текущее состояние и перспективы на будущее. Аквакульт. англ. 53, 2–13. doi: 10.1016/j.aquaeng.2012.11.008

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Давуд, Массачусетс (2021). Пищевой иммунитет кишечника рыб: важные идеи для устойчивой аквакультуры. Преподобный Aquac. 13, 642–663. doi: 10.1111/raq.12492

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Дуань Ю., Zhang, Y., Dong, H., Wang, Y., Zheng, X., and Zhang, J. (2017). Влияние диеты Clostridium butyricum на рост, состояние здоровья кишечника и устойчивость к аммиачному стрессу тихоокеанской белой креветки Litopenaeus vannamei . Иммунол рыбных моллюсков. 65, 25–33. doi: 10.1016/j.fsi.2017.03.048

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Дюма, А., Рагги, Т. , Баркхаус, Дж., Льюис, Э., и Вельцин, Э. (2018). Масляная фракция и частично обезжиренная мука личинок черной львинки ( Hermetia illucens ) по-разному влияют на показатели роста, эффективность корма, отложение питательных веществ, уровень глюкозы в крови и переваримость липидов радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ). Аквакультура 492, 24–34. doi: 10.1016/j.aquaculture.2018.03.038

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Элиа, А.С., Капуккио, М.Т., Кальдарони, Б., Магара, Г., Дорр, А.Дж.М., Биасато, И., и др. (2018). Влияние включения в рацион муки Hermetia illucens на гистологические признаки, состав кишечного муцина и биомаркеры окислительного стресса у радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ). Аквакультура 496, 50–57. doi: 10.1016/j.аквакультура.2018.07.009

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Этимез, М., и Балькасар, Дж. Л. (2015). Структура бактериального сообщества в кишечной экосистеме радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ), выявленная с помощью анализа генов 16S рРНК на основе пиросеквенирования. Рез. Вет. науч. 100, 8–11. doi: 10.1016/j.rvsc.2015.03.026

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Фоли, Дж. А., ДеФрис, Р., Аснер, Г.P., Barford, C., Bonan, G., Carpenter, S.R., et al. (2005). Глобальные последствия землепользования. Наука 309:570. doi: 10.1126/science.1111772

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Foley, J.A., Ramankutty, N., Brauman, K.A., Cassidy, E.S., Gerber, J.S., Johnston, M., et al. (2011). Решения для культивируемой планеты. Природа 478, 337–342. doi: 10.1038/nature10452

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Фрелих, Х.Э., Якобсен Н.С., Эссингтон Т.Е., Клавель Т. и Халперн Б.С. (2018a). Избегание экологических ограничений кормовой рыбы для кормовой аквакультуры. Нац. Поддерживать. 1, 298–303. doi: 10.1038/s41893-018-0077-1

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Фрёлих, Х. Э., Рунге, К. А., Джентри, Р. Р., Гейнс, С. Д., и Халперн, Б. С. (2018b). Сравнительные наземные корма и землепользование в мире, где преобладает аквакультура. Проц. Натл. акад. науч. 115, 5295–5300.doi: 10.1073/pnas.18016

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Gao, Q., Xiao, Y., Sun, P., Peng, S., Yin, F., Ma, X., et al. (2013). In vitro защитная эффективность Clostridium butyricum против инфекций рыб, вызываемых патогенами. Indian J. Microbiol. 53, 453–459. doi: 10.1007/s12088-013-0394-z

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Гаско, Л., Акути, Г., Бани, П., Далле Зотте, А., Даниели, П.П., Де Анджелис А. и др. (2020а). Насекомые и рыбные субпродукты как устойчивая альтернатива традиционным животным белкам в кормлении животных. ит. Дж. Аним. науч. 19, 360–372. дои: 10.1080/1828051X.2020.1743209

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Гаско Л., Бьянкароса И. и Лиланд Н. С. (2020b). От отходов к кормам: обзор последних знаний о насекомых как производителях белка и жира для кормов для животных. Курс. мнение Зеленый сустейн. хим. 23, 67–79.doi: 10.1016/j.cogsc.2020.03.003

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Гаско, Л., Юзефьяк, А., и Генри, М. (2020c). Помимо концепции белка: аспекты использования съедобных насекомых на животных для здоровья. J. Корм ​​для насекомых 0, 1–28. дои: 10.3920/jiff2020.0077

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Gatlin, D.M., Barrows, F.T., Brown, P., Dabrowski, K., Gaylord, T.G., Hardy, R.W., et al. (2007). Расширение использования устойчивых растительных продуктов в аквакормах: обзор. Аквакульт. Рез. 38, 551–579. doi: 10.1111/j.1365-2109.2007.01704.x

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Гинтер К., Кангур К., Кангур А., Кангур П. и Халдна М. (2011). Характер питания и онтогенетический сдвиг рациона мальков судака Sander lucioperca (L.) в озерах Пейпси и Выртсъярв (Эстония). Hydrobiologia 660, 79–91. doi: 10.1007/s10750-010-0393-6

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Генри, М.А., Гай Ф., Энес П., Перес-Хименес А. и Гаско Л. (2018a). Влияние частичной замены рыбной муки в рационе мукой личинок желтого мучного червя ( Tenebrio molitor ) на врожденный иммунный ответ и кишечные антиоксидантные ферменты радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ). Иммунол рыбных моллюсков. 83, 308–313. doi: 10.1016/j.fsi.2018.09.040

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Генри, Массачусетс, Гаско, Л., Чацифотис, С.и Пикколо, Г. (2018b). Влияет ли диетическая мука из насекомых на иммунную систему рыб? Случай с мучным червем Tenebrio molitor на европейском сибасе Dicentrarchus labrax . Дев. Комп. Иммунол. 81, 204–209. doi: 10.1016/j.dci.2017.12.002

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Генри М., Гаско Л., Пикколо Г. и Фоунтулаки Э. (2015). Обзор использования насекомых в рационе выращиваемой рыбы: прошлое и будущее. Аним.Кормовая наука. Технол. 203, 1–22. doi: 10.1016/j.anifeedsci.2015.03.001

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Хуа, К. (2021). Метаанализ влияния замены рыбной муки мукой из насекомых на показатели роста рыб. Аквакультура 530:735732. doi: 10.1016/j.aquaculture.2020.735732

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Hua, K., Cobcroft, J.M., Cole, A., Condon, K., Jerry, D.R., Mangott, A., et al. (2019). Будущее водного белка: значение источников белка в рационах аквакультуры. Одна Земля 1, 316–329. doi: 10.1016/j.oneear.2019.10.018

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Хуусконен, Х., Пииронен, Дж., Сюваранта, Дж., Эронен, Р., Биази, К., Киискинен, П., и соавт. (2019). Рацион и перемещения судака ( Sander lucioperca ) в большом олиготрофном озере с исключительно высоким уловом судака. Экол. Фрешват. Рыба 28, 533–543. дои: 10.1111/эфф.12495

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Хайбен, Д., Видакович, А., Вернер Халлгрен, С., и Лангеланд, М. (2019). Высокопроизводительное секвенирование кишечной микробиоты радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ), питавшейся личинками и предкуколками черной львинки ( Hermetia illucens ). Аквакультура 500, 485–491. doi: 10.1016/j.aquaculture.2018.10.034

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Кашинская, Е. Н., Симонов, Е. П., Кабилов, М. Р., Извекова, Г. И., Андрее, К. Б., и Соловьев, М. М. (2018).Диета и другие факторы окружающей среды формируют бактериальные сообщества кишечника рыб в эвтрофном озере. J. Appl. микробиол. 125, 1626–1641. doi: 10.1111/jam.14064

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Катя К., Борсра М.З.С., Ганесан Д., Куппусами Г., Херриман М., Солтер А. и др. (2017). Эффективность муки личинок насекомых вместо рыбной муки у молоди баррамунди Lates calcarifer , выращиваемой в пресной воде. Междунар. Аква.Рез. 9, 303–312. doi: 10.1007/s40071-017-0178-x

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Кихара М. и Саката Т. (1997). Ферментация пищевых углеводов в короткоцепочечные жирные кислоты кишечными микробами и ее влияние на морфологию кишечника детритоядной костистой тиляпии ( Oreochromis niloticus ). Комп. Биохим. Физиол. Часть А Мол. интегр. Физиол. 118, 1201–1207. doi: 10.1016/S0300-9629(97)00052-2

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Клиндворт, А., Pruesse, E., Schweer, T., Peplies, J., Quast, C., Horn, M., et al. (2012). Оценка общих праймеров для ПЦР гена рибосомной РНК 16S для классических исследований и исследований разнообразия на основе секвенирования следующего поколения. Рез. нуклеиновых кислот. 41:gks808. doi: 10.1093/nar/gks808

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Ларсен А.М., Мохаммед Х.Х. и Ариас Ч.Р. (2014). Характеристика кишечной микробиоты трех промысловых видов тепловодных рыб. J. Appl. микробиол. 116, 1396–1404. doi: 10.1111/jam.12475

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Ли Г., Се П., Ли Х., Чен Дж., Хао Л. и Сюн К. (2010). Количественное профилирование экспрессии мРНК генов суперсемейства глутатион-S-трансфераз в различных тканях пестрого толстолобика ( Aristichthys nobilis ). J. Biochem. Мол. Токсикол. 24, 250–259. doi: 10.1002/jbt.20333

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Ли, Х., Тянь С., Чжао К., Цзян В. и Донг С. (2019). Влияние Clostridium butyricum в различных формах на показатели роста, устойчивость к болезням, экспрессию генов, участвующих в иммунных реакциях, и сигнальный путь mTOR Litopenaeus vannamai. Иммунол рыбных моллюсков. 87, 13–21. doi: 10.1016/j.fsi.2018.12.069

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Li, J., Ni, J., Li, J., Wang, C., Li, X., Wu, S., et al. (2014). Сравнительное исследование микробиоты желудочно-кишечного тракта восьми видов рыб с разным образом питания. J. Appl. микробиол. 117, 1750–1760. doi: 10.1111/jam.12663

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Ли, С., Цзи, Х., Чжан, Б., Чжоу, Дж., и Ю, Х. (2017). Обезжиренная черная львиная муха ( Hermetia illucens ) мука из личинок в рационах для молоди карпа Цзянь ( Cyprinus carpio var. Jian ): показатели роста, активность антиоксидантных ферментов, активность пищеварительных ферментов, гистологическая структура кишечника и гепатопанкреаса. Аквакультура 477, 62–70. doi: 10.1016/j.aquaculture.2017.04.015

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Либран-Перес, М., Перейро, П., Фигерас, А., и Новоа, Б. (2019). Противовирусная активность пальмитиновой кислоты посредством ингибирования аутофагического потока у рыбок данио ( Danio rerio ). Рыбная раковина. Иммунол. 95, 595–605. doi: 10.1016/j.fsi.2019.10.055

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Лок, Э. Р., Арсивалла, Т.и Ваагбё, Р. (2016). Мука из личинок насекомых как альтернативный источник питательных веществ в рационе атлантического лосося ( Salmo salar ) после линьки. Аквакульт. Нутр. 22, 1202–1213. doi: 10.1111/anu.12343

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Магальяйнс, Р., Санчес-Лопес, А., Леаль, Р.С., Мартинес-Льоренс, С., Олива-Телес, А., и Перес, Х. (2017). Черная львиная муха ( Hermetia illucens ) мука перед куколками в качестве замены рыбной муки в рационе европейского морского окуня ( Dicentrarchus labrax ). Аквакультура 476, 79–85. doi: 10.1016/j.aquaculture.2017.04.021

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Магоч, Т., и Зальцберг, С.Л. (2011). FLASH: быстрая корректировка длины коротких ридов для улучшения сборки генома. Биоинформатика 27, 2957–2963. doi: 10.1093/биоинформатика/btr507

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Мартинес-Альварес, Р. М., Моралес, А. Э., и Санс, А. (2005). Антиоксидантная защита рыб: биотические и абиотические факторы. Rev. Fish Biol. Рыба. 15, 75–88. doi: 10.1007/s11160-005-7846-4

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Мидхун, С.Дж., Ниту, С., Висак, А., Арун, Д., Радхакришнан, Э.К., и Джйотис, М. (2017). Антибактериальная активность и пробиотическая характеристика автохтонного Paenibacillus polymyxa , выделенного из Anabas testudineus (Bloch, 1792). Микроб. Патог. 113, 403–411. doi: 10.1016/j.micpath.2017.11.019

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Наяк, С.К. (2010а). Роль желудочно-кишечной микробиоты рыб. Аквакульт. Рез. 41, 1553–1573. doi: 10.1111/j.1365-2109.2010.02546.x

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Нго Д.-Х. и Ким С.-К. (2014). «Глава вторая — Антиоксидантное действие хитина, хитозана и их производных», в Морские углеводы: основы и применение, часть B , изд. С.-К. Ким (Амстердам: Elsevier Inc.), 15–31.

Академия Google

Ногалес-Мерида, С., Gobbi, P., Józefiak, D., Mazurkiewicz, J., Dudek, K., Rawski, M., et al. (2019). Мука из насекомых в питании рыб. Преподобный Aquac. 11, 1080–1103. doi: 10.1111/raq.12281

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Nyina-Wamwiza, L., Xu, X.L., Blanchard, G., and Kestemont, P. (2005). Влияние соотношения белков, липидов и углеводов в рационе на рост, эффективность кормления и состав тела мальков судака Sander lucioperca . Аквакульт. Рез. 36, 486–492.doi: 10.1111/j.1365-2109.2005.01233.x

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Огунджи, Дж. О., Нимпч, Дж., Виганд, К., и Шульц, К. (2007). Оценка влияния рациона муки личинок комнатной мухи (magmeal) на каталазу, глутатион-S-трансферазу и концентрацию гликогена в печени мальков Oreochromis niloticus . Комп. Биохим. Физиол. Часть А Мол. интегр. Физиол. 147, 942–947. doi: 10.1016/j.cbpa.2007.02.028

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Пан, Х., Ву Т., Сонг З., Тан Х. и Чжао З. (2008a). Иммунный ответ и повышенная устойчивость к болезням у китайского барабана, Miichthys miiuy (Basilewsky), после перорального введения живых или мертвых клеток Clostridium butyrium CB2. Дж. Фиш Дис. 31, 679–686. doi: 10.1111/j.1365-2761.2008.00955.x

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Пан, X., Ву, Т., Чжан, Л., Сун, З., Тан, Х. и Чжао, З. (2008b). Оценка in vitro приверженности и антимикробных свойств пробиотика-кандидата Clostridium butyricum CB2 для выращиваемой рыбы. J. Appl. микробиол. 105, 1623–1629. doi: 10.1111/j.1365-2672.2008.03885.x

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Пасси С., Катауделла С., Ди Марко П., Де Симоне Ф. и Растрелли Л. (2002). Состав жирных кислот и уровни антиоксидантов в мышечной ткани различных средиземноморских морских видов рыб и моллюсков. Дж. Сельское хозяйство. Пищевая хим. 50, 7314–7322. дои: 10.1021/jf020451y

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Поликар, Т., Блеха М., Кржиштан Й., Мраз Й., Велишек Й., Стара А. и др. (2016). Сравнение продуктивности и качества разнокультурной молоди судака ( Sander lucioperca L.) как ценного продукта для выращивания на доращивании. Аквакульт. Междунар. 24, 1607–1626. doi: 10.1007/s10499-016-0050-9

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Поликар Т., Шефер Ф.Дж., Панана Э., Мейер С., Тирлинк С., Тонер Д. и соавт. (2019). Недавний прогресс в технологии выращивания окуневых рыб в Европе – устранение узких мест. Аквакульт. Междунар. 27, 1151–1174. doi: 10.1007/s10499-019-00433-y

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Рамирес, К., Коронадо, Дж., Силва, А., и Ромеро, Дж. (2018). Cetobacterium является основным компонентом микробиома гигантской амазонской рыбы ( Arapaima gigas ) в Эквадоре. Животные 8:189. doi: 10.3390/ani8110189

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Рэй, А. К., Гош, К., и Рингё, Э.(2012). Бактерии, продуцирующие ферменты, выделенные из кишечника рыб: обзор. Аквакульт. Нутр. 18, 465–492. doi: 10.1111/j.1365-2095.2012.00943.x

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Ренна, М., Скьявоне, А., Гай, Ф., Даббу, С., Лассиана, К., Мальфатто, В., и другие. (2017). Оценка пригодности частично обезжиренной муки из личинок черной львинки ( Hermetia illucens L.) в качестве ингредиента для рационов радужной форели ( Oncorhynchus mykiss Walbaum). Дж. Аним. науч. Биотехнолог. 8:57. doi: 10.1186/s40104-017-0191-3

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Римольди С., Антонини М., Гаско Л., Морони Ф. и Терова Г. (2021). Микробные сообщества кишечника радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ) могут быть улучшены путем кормления Hermetia illucens мукой/рационом с низким содержанием рыбной муки. Рыбная физиол. Биохим. 2021, 918–911. doi: 10.1007/s10695-020-00918-1

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Римольди, С., Джини Э., Яннини Ф., Гаско Л. и Терова Г. (2019). Влияние пищевой муки из насекомых из предкуколок Hermetia illucens на автохтонную микробиоту кишечника радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ). Животные 9:143. doi: 10.3390/ani

43

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Рингё, Э., Чжоу, З., Олсен, Р. Э., и Сонг, С. К. (2012). Использование хитина и криля в аквакультуре – влияние на микробиоту кишечника и иммунную систему: обзор. Аквакульт. Нутр. 18, 117–131. doi: 10.1111/j.1365-2095.2011.00919.x

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Роза, К.Е., Фигейредо, М.А., Лейнс, К.Ф.К., Алмейда, Д.В., Монсеррат, Дж.М., и Маринс, Л.Ф. (2008). Скорость метаболизма и продукция активных форм кислорода у разных генотипов GH-трансгенных рыбок данио. Комп. Биохим. Физиол. Б Биохим. Мол. биол. 149, 209–214. doi: 10.1016/j.cbpb.2007.09.010

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Шульц, К., Гюнтер С., Вирт М. и Реннерт Б. (2006). Показатели роста и состав тела судака ( Sander lucioperca ) при кормлении различными рецептурными и натуральными рационами. Аквакульт. Междунар. 14, 577–586. doi: 10.1007/s10499-006-9056-z

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Шульц, К., Кнаус, У., Вирт, М., и Реннерт, Б. (2005). Влияние различного профиля жирных кислот в рационе на показатели роста, жирные кислоты, состав тела и тканей молоди судака ( Sander lucioperca ). Аквакульт. Нутр. 11, 403–413. doi: 10.1111/j.1365-2095.2005.00369.x

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Sealey, W.M., Gaylord, T.G., Barrows, F.T., Tomberlin, J.K., McGuire, M.A., Ross, C., et al. (2011). Органолептический анализ радужной форели, Oncorhynchus mykiss , питавшейся обогащенными предкуколками черной львинки, Hermetia illucens . J. Всемирная аквакультура. соц. 42, 34–45. doi: 10.1111/j.1749-7345.2010.00441.x

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Смарасон, Б.О., Огмундарсон О., Арнасон Дж., Бьорнсдоттир Р. и Давиосдоттир Б. (2017). Оценка жизненного цикла исландского арктического гольца, питающегося тремя различными типами корма. Турецкий Дж. Фиш. Аква. науч. 17, 79–90. дои: 10.4194/1303-2712-v17_1_10

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Сметана С., Шмитт Э. и Матис А. (2019). Устойчивое использование биомассы насекомых Hermetia illucens для производства кормов и продуктов питания: атрибутивная и последующая оценка жизненного цикла. Ресурс. Консерв. Переработка 144, 285–296. doi: 10.1016/j.resconrec.2019.01.042

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Стейскал, В., Куржил, Дж., Поликар, Т., и Свободова, З. (2016). Липидоз селезенки у интенсивно культивируемого окуня, Perca fluviatilis L. J. Fish Dis. 39, 87–93. doi: 10.1111/jfd.12327

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Стейскал В., Тран Х. К., Прокесова М., Гебауэр Т., Giang, P.T., Gai, F., et al. (2020). Частично обезжиренная мука личинок Hermetia illucens в рационе молоди евразийского окуня ( Perca fluviatilis ). Животные 10:1876. doi: 10.3390/ani10101876

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

St-Hilaire, S., Sheppard, C., Tomberlin, J.K., Irving, S., Newton, L., McGuire, M.A., et al. (2007). Предкуколки мух как корм для радужной форели Oncorhynchus mykiss . Дж.Всемирная аквакультура. соц. 38, 59–67. doi: 10.1111/j.1749-7345.2006.00073.x

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Tacon, A.G.J., and Metian, M. (2015). Корм имеет значение: удовлетворение потребностей аквакультуры в кормах. Обр. Рыба. науч. Аква. 23, 1–10. дои: 10.1080/23308249.2014.987209

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Такон, А. Г., Хасан, М. Р., и Метиан, М. (2011). Спрос и предложение кормовых ингредиентов для выращивания рыбы и ракообразных: тенденции и перспективы.Технический документ ФАО по рыболовству и аквакультуре , Vol. 564. Рим: ФАО, doi: 10.4172/2155-9546.1000234

.

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Tang, Q.Q., Feng, L., Jiang, W.D., Feng, W.D., Jiang, Y., Liu, J., et al. (2013). Влияние диетической меди на активность ферментов роста, пищеварения и щеточной каемки и антиоксидантную защиту гепатопанкреаса и кишечника у молодого белого амура ( Ctenopharyngodon idella ). биол. След. Элем. Рез. 155, 370–380.doi: 10.1007/s12011-013-9785-6

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Терова Г., Римольди С., Асьоне К., Джини Э., Чеккотти К. и Гаско Л. (2019). Микробиота кишечника радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ) модулируется мукой насекомых из предкуколок Hermetia illucens в рационе. Rev. Fish Biol. Рыба. 29, 465–486. doi: 10.1007/s11160-019-09558-y

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Точер, Д.R., Mourente, G., Van Der Eecken, A., Evjemo, J.O., Diaz, E., Bell, J.G., et al. (2002). Влияние пищевого витамина Е на механизмы антиоксидантной защиты молоди тюрбо ( Scophthalmus maximus L.), палтуса ( Hippoglossus hippoglossus L.) и морского леща ( Sparus aurata L.). Аквакульт. Нутр. 8, 195–207. doi: 10.1046/j.1365-2095.2002.00205.x

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Тран, Х. К., Ван Доан, Х., и Стейскал, В.(2021). Влияет ли пищевой продукт Tenebrio molitor на способность плавать, потребление энергии и физиологические реакции европейского окуня Perca fluviatilis ? Аквакультура 539:736610. doi: 10.1016/j.aquaculture.2021.736610

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

ван дер Шпигель, М., Ноордам, М.Ю., и ван дер Фелс-Клеркс, Х.Дж. (2013). Безопасность новых источников белка (насекомые, микроводоросли, водоросли, ряска, рапс) и законодательные аспекты их применения в производстве продуктов питания и кормов. Компр. Преподобный Food Sci. Пищевая безопасность 12, 662–678. дои: 10.1111/1541-4337.12032

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

ван Хьюис, А., и Унинкс, Д.Г.А.Б. (2017). Экологическая устойчивость насекомых в качестве пищи и корма. Преподобный Агрон. Устойчивый Дев. 37:43. doi: 10.1007/s13593-017-0452-8

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

van Kessel, M.A.H.J., Dutilh, B.E., Neveling, K., Kwint, M.P., Veltman, J.А., Флик Г. и соавт. (2011). Пиросеквенирование ампликонов гена 16S рРНК для изучения микробиоты желудочно-кишечного тракта карпа ( Cyprinus carpio L.). АМБ Экспресс 1:41. дои: 10.1186/2191-0855-1-41

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Варгас-Абундез, А. Дж., Рандаццо, Б., Фоддаи, М., Санчини, Л., Труцци, К., Джорджини, Э., и др. (2019). Рацион на основе еды из насекомых для рыб-клоунов: биометрические, гистологические, спектроскопические, биохимические и молекулярные последствия. Аквакультура 498, 1–11. doi: 10.1016/j.aquaculture.2018.08.018

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Винни М., Лаппалайнен Дж., Малинен Т. и Лехтонен Х. (2009). Низкорослый рост судака Sander lucioperca в озере Сахайорви, Финляндия. J. Fish Biol. 74, 967–972. doi: 10.1111/j.1095-8649.2009.02181.x

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Ван, С., Лю, Дж. З., Ху, Дж. С., Ву, Х., Ли, Ю.Л., Чен, Х.Л. и соавт. (2011). Каскад p38 MAPK/ERK-Akt, активируемый АФК, играет центральную роль в пролиферации гепатоцитов, стимулируемой пальмитиновой кислотой. Свободный радикал. биол. Мед. 51, 539–551. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2011.04.019

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Zarantoniello, M., Randazzo, B., Gioacchini, G., Truzzi, C., Giorgini, E., Riolo, P., et al. (2020а). Рыбки данио ( Danio rerio ) физиологические и поведенческие реакции на диеты на основе насекомых: мультидисциплинарный подход. наук. Респ. 10:10648. doi: 10.1038/s41598-020-67740-w

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Zarantoniello, M., Randazzo, B., Truzzi, C., Giorgini, E., Marcellucci, C., Vargas-Abúndez, J.A., et al. (2019). Шестимесячное исследование рациона рыбок данио, основанного на черном солдатском мушке ( Hermetia illucens ). наук. Респ. 9:8598. doi: 10.1038/s41598-019-45172-5

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

Зарантоньелло, М., Zimbelli, A., Randazzo, B., Compagni, M.D., Truzzi, C., Antonucci, M., et al. (2020б). Черный солдатик ( Hermetia illucens ), выращенный на побочном продукте обжаренного кофе, и Schizochytrium sp. как устойчивый наземный ингредиент для производства кормов для аквакультуры. Аквакультура 518:734659. doi: 10.1016/j.aquaculture.2019.734659

Полнотекстовая перекрестная ссылка | Академия Google

Зоррихзахра, М.Дж., Делшад, С.Т., Адель, М., Тивари, Р., Картик, К., Дхама, К., и другие. (2016). Пробиотики как полезные микробы в аквакультуре: обновленная информация об их множественных способах действия: обзор. Вет. Вопрос 36, 228–241. дои: 10.1080/01652176.2016.1172132

Реферат PubMed | Полный текст перекрестной ссылки | Академия Google

(PDF) Сравнение роста судака (Sander lucioperca) и гибридов судака (S. lucioperca) × волжского судака (S. volgensis)

6 Müller et al.

Бойяи Янош Товарищество Венгерской академии наук и

Венгерско-польский двусторонний проект (PL-5/08).

Ссылки

Балон Э.К., Момот В.Т. и Х.А. Regier, 1977. Репродуктивные гильдии

окуней: результаты палеогеографической истории и экологической сукцессии. J.

Рыба. Рез. Бд. Канада, 34:1910-1921.

Бартли Д.М., Рана К. и А.Дж. Имминк, 2000. Использование межвидовых гибридов

в аквакультуре и рыболовстве. Преподобный Фиш Биол. Рыб., 10:325-337.

Берчени М., Мерт Дж., Фёдельмеси З.и Т. Мюллер, 2001, Выращивание

судака, окуня и волжского судака на гранулах. п. 41. В кн.: Тезисы докладов, 25.

Науч. конф. Рыболовство и аквакультура, рез. Инст. Рыба. Аквакульт. Ирригация,

Сарваш, Венгрия (на венгерском языке).

Биро П., Специар А. и Л. Тёльг, 1998 г. Балатонский halállományának

minőségi-mennyiségi felmérése (1995-98). стр. 134-137. В: J. Salánki, J.

Padisak (ред.). Балатон kutatásának 1997-es eredményei. VEAB и MEH

BT, Веспрем (на венгерском языке).

Demska-Zakęś K. and Z. Zakęś, ​​1997. Влияние 17 α-метилтестостерона

на дифференцировку гонад у судака, Stizostedion lucioperca L. Aquacult.

Рез., 28:59-63.

Галинат Г.Ф., Уиллис Д.В., Блэквелл Б.Г. and M.J. Hubers, 2002.

Влияние программы интродукции saugeye (Sauger × Walleye) на популяцию черного краппи

в озере Ричмонд, Южная Дакота.Н. Ам. Дж. Фиш. Управ.,

22, 1416-1424.

Hilge V., 1990. Beobachtungen zur Aufzucht von Zandern (Stizostedion

lucioperca) im Labor. Archiv für Fischereiwissenschaft, 40:167-173.

Кестемонт П., Сюй С.Л., Хамза Н., Мабуду Дж. и И.И. Toko, 2007.

Влияние возраста отъема и рациона на выращивание личинок судака. Аквакультура,

264:197-204.

Молнар Т., Ханц К., Бодис М., Мюллер Т., Bercsényi M. and P. Horn,

2004. Влияние начальной плотности посадки на рост и выживаемость

мальков судака, выращенных в интенсивных условиях. Аквакульт. Междунар.,

12:181-189.

Молнар Т., Мюллер Т., Сабо Г. и К. Ханц, 2006 г. Выращивание и кормление

Конверсия интенсивно выращиваемого волжского окуня (Stizostedion volgensis). Acta

Agraria Kaposváriensis, 10:315-319.

Молнар Т., Szabó A., Szabó G., Szabó C. and C. Hancz, 2007. Влияние

различного содержания жира в рационе и типа жира на рост и состав тела

интенсивно выращиваемого судака Sander lucioperca (L.) . Аквакульт. Nutr.,

12:173-182.

Müller T., Taller J., Nyitrai G., Kucska B., Cernák I. и M. Bercsényi,

2004. Гибрид судака (Sander lucioperca) и волжского окуня (S. volgense

GMELIN) . Аквакульт.Рез. 35:915-916.

Мюллер Т., Ньитраи Г., Треновски М., Берчени М. и Б. Урбаньи, 2009.

Искусственное разведение волжского судака (Sander volgensis). стр. 436-437. В:

Спецификация EAS. Опубл. 38. Аквакульт. Eur., 14-17 августа, Тронхейм, Норвегия.

Выращенный в Дании судак / судак – свежие поставки круглый год

– Датская аквакультура

Компания AquaPri занимается выращиванием судака (судака) с 2005 года и может контролировать всю цепочку от яйца до момента, когда рыба будет готова к отправке нашим ценным клиентам.В 2016 году АкваПри с гордостью открыла свой новый комплекс УЗВ для разведения судака. Мы используем новейшие технологии на заводе и планируем производить 700 тонн судака в год на этом предприятии.

Будучи одной из немногих компаний в мире, AquaPri разработала метод, позволяющий судаку (судаку) нереститься четыре раза в год. Это дает нам уникальную возможность поставлять однородную продукцию высокого качества круглый год — независимо от сезона.

Судак имеет невероятно нежную структуру мяса и высоко ценится во всей Европе.Это красивое мясо белой рыбы имеет плотную текстуру и очень нежное при приготовлении, а также имеет высокое содержание натурального белка.

Почему выращенный судак?

Мы можем осуществлять поставки круглый год, что дает нашим клиентам возможность заранее планировать кампании и другие маркетинговые мероприятия.

Судак (Судак) от АкваПри всегда абсолютно свежий. Обычно через 6 часов после того, как рыбу достали из воды, она готова к отплытию.

Благодаря среде выращивания, наш выращенный судак свободен от паразитов, поэтому его не нужно замораживать. Это означает, что наш судак можно использовать в свежем виде для приготовления суши и сашими.

Выращенный на ферме судак внесен в зеленый список WWF (Всемирный фонд дикой природы).

Высокая безопасность пищевых продуктов благодаря полному контролю и прослеживаемости на всех этапах выращивания и упаковки нашего судака.

Наш выращенный судак

Мы предлагаем:

  • Свежий круглый судак, размер 600–1000 г и 1000–2000 г
  • Свежий круглый судак, очищенный от чешуи, размер 600–1000 г и 1000–2000 г
  • Свежий потрошеный судак, размер 540–900 г и 900–1800 г
  • Свежее филе судака, с кожей и без кожи, размер 100–300 г и 200–400 г

Нажмите на эту ссылку для вдохновения и рецептов.

Не стесняйтесь обращаться к Мортену Холму, Мартину Альбертсу или Бертелю Ульву для получения дополнительной информации о судаке (судаке) от AquaPri.

Профиль судака — PDF на английском, немецком, французском, датском и шведском языках:
AquaPri — судак, выращенный на ответственной ферме — судак — из датской аквакультуры
AquaPri Zander aus dänischer Aquakultur аквакультура
AquaPri gös danska vattenbruk

Судак от АкваПри – новый фаворит шеф-повара!

Перевод в англо⇔ немецком словаре LEO

Существительные :: Похожие :: Похожие :: Обсуждения ::

существительных

93 350

PikePerch или: pike-pike-pike [Zool.] der Zander PL. Шир .: Sander lucioperca, Stizostedion lucioperca [Ихтиология]
судака или : судак [. ZOOL] дер Шилл Шир .: Sander lucioperca, Stizostedion lucioperca [Ихтиология]
  судак    или: судак [ЗООЛ.] Amerikanischer Цандера Шир .: Sander vitreus, Stizostedion vitreum [Ихтиология]
PikePerch или: Pike-Puch [Zool.] der Glasaugenbarsch LAT.: Шлифовальный станок vitreus, Stizostedion vitreum
93 176 судака + или: судака [ZOOL.] дер Fogosch (Австрия) Лат .: Sander lucioperca
Волга судак ( или: щука -окунь) [ЗООЛ.]. Лат .: Sander volgensis [Ихтиологии]
море судак [зоол.] der Meerzander пл. Lat Получите помощь от других пользователей на наших форумах.

Редактируйте списки слов

Sortieren Sie Ihre gespeicherten Vokabeln.

История поиска

Sehen Sie sich Ihre letztensuchanfragen an.

 

Англо-⇔ Немецкий словарь – leo.org: Стартовая страница

SUCHWORT – Перевод в англо-⇔ немецком словаре LEO

LEO.org: Ваш онлайн-словарь для англо-немецкого перевода. Предлагая форумы, словарный тренер и языковые курсы. Также доступно как приложение!

Выучите перевод слова SUCHWORT в англо-немецком словаре LEO. С таблицами существительных/глаголов для разных падежей и времен ✓ Ссылки на аудио произношения и соответствующие обсуждения на форуме ✓ Бесплатный словарный тренажер ✓

  Запись сохранена в Trainer.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован.

2022 © Все права защищены.