Отзывы икра судака: Я больше месяца боялась открывать эти консервы. Показываю икру судака за 39,99 из «Пятёрочки» | Консервы

Как предпочтительней для Вас приготовить судака?Poll Options are limited because JavaScript is disabled in your browser.

• Жарить на сковороде 45%, 175 голосов

  175 голосов 45%

  175 голосов – 45% из всех голосов

• Запекать или тушить 32%, 124 голоса

  124 голоса 32%

  124 голоса – 32% из всех голосов

• Коптить 10%, 40 голосов

  40 голосов 10%

  40 голосов – 10% из всех голосов

• В виде первых блюд 5%, 21 голос

  21 голос 5%

  21 голос – 5% из всех голосов

• Солить и мариновать 4%, 15 голосов

  15 голосов 4%

  15 голосов – 4% из всех голосов

• Другое 3%, 12 голосов

  12 голосов 3%

  12 голосов – 3% из всех голосов

Всего голосов: 387

22. 07.2020

×

Вы или с вашего IP уже голосовали.

Засолка

Получить вкусную бутербродную закуску в домашних условиях совсем несложно. Но не менее важно правильно разделать рыбу и подготовить ее к засолке.

Совет: хранить икру нужно в стеклянных баночках, с плотно прилегающими крышками, лучше с закруткой.

• Ястыки судака 300гр
• Сливочное масло 50гр
• Вода 1л
• Соль, перец — по вкусу

Калории: 87 ккал

Белки: 17 г

Жиры: 2 г

Углеводы: 0 г

В пленках

Чтобы облегчить и ускорить процесс, засолить икру можно прямо в пленке.

Время подготовки: 5 минут.

Энергетическая ценность:

• белки — 17,0;
• жиры — 2,0;
• углеводы — 0,00;
• калорийность — 87,4.

Рецепт засолки:

1. Промываем ястыки.
2. Каждый хорошенько обмакиваем в крупную соль.
3. Укладываем плотно друг к другу в емкость.
4. Засаливаем в холодильнике 2-3 дня.
5. По истечении времени промываем от соли и рассола.
6. Если икра получилась слишком соленая, то перед употреблением ее промывают под проточной водой.

На заметку: для посола подходит свежая икра, размороженная теряет часть своих вкусовых качеств и полезных свойств — из нее готовят другие блюда.

Жаренная на сковороде с ястыками

Если при разделке рыбы вам попалась икра, а солить нет ни времени, ни желания, то есть простой выход — быстро поджарьте ее и получите бонусом еще одно вкусное лакомство.

Время подготовки: очень быстро.

Время приготовления: 5 минут.

Энергетическая ценность:

• белки — 18,2;
• жиры — 6,5;
• углеводы — 0,4;
• калорийность — 130,2.

Продукты:

• ястыки — 2 штуки с одной рыбы;
• мука — 50 грамм;
• масло растительное для жарки — 1 ст.л;
• соль.

Приготовление:

1. Мешочки с икрой промойте, обсушите.
2. Слегка посолить.
3. Обваляйте в муке со всех сторон;
4. Обжарьте на растительном масле по 2 минуты с каждой стороны.
5. Выложите на салфетку жареную икру, чтобы стек лишний жир.

На заметку: жарить нужно зрелую икру — под пленкой должны четко проступать очертания зерен, от этого зависит вкус.

Котлеты

Вкусные котлеты получаются не только из рыбного из рыбного филе, но и из икорной массы. Чтобы в этом убедиться, сделайте на порцию одну пробу по такому рецепту и Вы станете готовить их постоянно.

Подготовка продуктов: полчаса.

Процесс готовки: 20 минут.

Энергетическая ценность:

• белки — 11,7;
• жиры — 24,4;
• углеводы — 6,8;
• калорийность — 295,3.

Ингредиенты:

• икра судака- 0,5 кг;
• лук — 1 шт.;
• 1 куриное яйцо;
• 1 ст. ложка сметаны;
• мука пшеничная — 3 ст.л;
• манка — 3 ст.л;
• соль и черный молотый перец по вкусу;
• растительное масло для жарки — 100 мл;
• панировочные сухари — 100 грамм.

Пошаговый рецепт:

1. Очищаем икринки от пленки. Удобно использовать для этого сито.
2. Лук прокручиваем на мясорубке;
3. В единой емкости смешиваем все компоненты, кроме масла. Солить и перчить по вкусу.
4. Оставляем на 20 минут для набухания манной крупы.
5. Еще раз перемешиваем и проверяем консистенцию — если слишком жидкий добавляем еще муки или размоченный хлебный мякиш.
6. Из икорного фарша формируем котлетки, обваливаем в сухарях.
7. Пожарить с каждой стороны до золотистого цвета по 3 минуты.
8. После накрываем крышкой, уменьшаем огонь и выдерживаем на сковороде еще пару минут.

На заметку: можно делать фарш из жареной икры, остальные шаги остаются без изменений.

Оладьи

Это больше закуска, чем самостоятельное блюдо. Вкусно пожарить икорные оладушки и подавать их со сметанно-чесночным соусом или тар-тар, который тоже можно приготовить дома самостоятельно.

Подготовка продуктов: 1/3 часа.

Процесс готовки: 20 минут.

Энергетическая ценность:

• белки — 13,8;
• жиры — 14,2;
• углеводы — 3,7;
• калорийность — 198,4.

Необходимые продукты:

• икра судака — 300 грамм;
• яйцо — 1 шт.;
• лук и морковь — по 1 шт.;
• мука — 3 ст.л. с горкой;
• сода — на кончике ножа;
• соль;
• масло растительное — 70 мл.

Поэтапный рецепт:

1. Удаляем икряную пленку любым удобным способом.
2. В освобожденную икорную массу добавляем немного соли.
3. Лук измельчаем блендером, морковь трем на мелкой терке, яйцо взбиваем в пиале.
4. Добавляем все эти ингредиенты к икре, гасим уксусом соду и всыпаем муку.
5. Тщательно вымешиваем, при необходимости еще уплотняем мукой.
6. Даем тесту немного настояться.
7. Выкладываем оладушки на разогретую сковородку с маслом и обжариваем с двух сторон, пока не появится золотистый цвет.

Блины

Блинчики с добавлением икры судака и сочной начинкой станут неожиданным вариантом и уж точно удивят всех насыщенным вкусом.

Подготовка продуктов: 1/2 часа.

Готовка: полчаса.

Энергетическая ценность:

• белки — 19,8;
• жиры — 16,7;
• углеводы — 9,2;
• калорийность — 247,0.

Продукты:

• икра судака — 0,3 кг;
• 1 луковица;
• 1 морковка;
• мука — 100 грамм;
• яйцо куриное — 2 шт. ;
• кефир — 2 стакана;
• соль, перец;
• масло растительное — 100 мл.

Для начинки:

• сыр твердых сортов — 150 грамм;
• яйцо куриное вкрутую — 2 штуки;
• рубленая зелень — 50 грамм;
• майонез — 1 ст.л.

Пошаговый рецепт:

1. Лук и морковь взбиваем блендером.
2. Пробитую икру посолить, поперчить и добавить овощи.
3. Вбиваем яйца и вливаем кефир. Смешиваем ингредиенты с помощью деревянной ложки или силиконовой лопатки.
4. Всыпаем муку и мешаем до тех пор, пока масса не станет однородной.
5. Жарим на обычной блинной сковородке. Переворачивать нужно более аккуратно, чтобы не нарушить целостность.
6. Готовим начинку: яйцо и сыр измельчаем с помощью терки. Добавляем соль, перец, майонез и зелень. Получится густая масса.
7. На каждый блин выкладываем длинной полоской смесь и сворачиваем трубочкой.
8. Подаем с чесночно-майонезным соусом.

Запеканка

Такое блюдо выглядит очень аппетитно, в процессе готовки распространяется нереальный аромат, а при желании его можно красиво украсить и сделать коронным номером на праздничном столе. А ингредиенты есть дома у каждой хозяйки.

Подготовка продуктов: полчаса.

Процесс приготовления: 45 минут.

Энергетическая ценность порции:

• белки — 13,9;
• жиры — 17,2;
• углеводы — 15,6;
• калорийность — 272,0.

Продукты:

• икра — 0,5 кг;
• яйца — 3 шт.;
• сметана жирная — 3 ст.л;
• манка — 3 ст.л;
• лук и морковь — по 1 шт.;
• масло растительное — 100 мл;
• масло сливочное — 100 гр;
• перья зеленного лука — 2х50 гр;
• соль, перец молотый, паприка,;
• петрушка и укроп для украшения.

Приготовление блюда:

1. Пробиваем икру судака.
2. Лук шинкуем полукольцами, морковь натираем на крупной терке.
3. Жарим на подсолнечном масле, пока овощи не станут мягкими.
4. Заливаем манку водой, для того, чтобы она разбухла.
5. Взбиваем яйца со сметаной, солью, перцем и паприкой.
6. Смешиваем все продукты воедино. Мешаем аккуратно, чтобы икра не превратилась в кашу.
7. Добавляем порезанный зеленый лук и еще раз перемешиваем.
8. Форму для запекания смазываем сливочным маслом.
9. Выкладываем в нее полученную массу.
10. Выпекаем в разогретой до 180 градусов духовке 20 минут.
11. Мелко рубим зелень, смешиваем с растопленным сливочным маслом.
12. Готовую запеканку поливаем теплой смесью, нарезаем на порции и подаем к столу.

Насколько красиво смотрится икряная запеканка из судака, можно увидеть на фото ниже.

Польза и вред икры

Икра любой рыбы более насыщена полезными веществами, чем другие ее части. Но судак — особо ценная речная рыба. Ее регулярное употребление в пищу:

• укрепляет стенки сосудов головного мозга;
• уменьшает холестерин;
• стимулирует рост волос и ногтей:
• улучшает состояние кожи;
• усиливает защитные свойства организма;
• профилактика болезней костей;
• благотворно влияет на сердечную мускулатуру;
• насыщает организм фосфором, витаминами группы В, жирными кислотами и йодом.

Но все от чего бывает польза, может принести и вред при различных сопутствующих факторах:

• при плохой обработке икры есть риск заражения гельминтами и другими вредоносными организмами;
• при употреблении несвежей икры высокий риск отравления;
• аллергия на рыбные продукты или индивидуальная непереносимость;
• в больших количествах противопоказана тем кто следит за весом или находится на диете.

Если Вы не особо уделяли внимание такой хищной рыбе как судак, то пришло время это исправить. Можно ли есть икру судака? Можно и даже нужно, продукт диетический и безвредный в разумных количествах. И как видите, засолка икры рыбы в домашних условиях — не единственный вариант приготовления столь полезного продукта, выбор огромен и каждый найдет для себя рецепт по душе.

что нужно знать – «Еда»

Икра: что нужно знать – «Еда»

Подбор рецептов

• 
  Любое меню
• 
  Безглютеновая диета
• 
  Вегетарианская еда
• 
  Веганская еда
• 
  Безлактозная диета
• 
  Детское меню
• 
  Низкокалорийная еда
• 
  Постная еда
• 
  Меню при диабете

Подобрать рецепты

Ингредиенты, детали

ВКЛЮЧИТЬ ИНГРЕДИЕНТЫ

ИСКЛЮЧИТЬ ИНГРЕДИЕНТЫ

ПОПУЛЯРНЫЕ ИНГРЕДИЕНТЫ

Показать

Очистить все

Гид по главному русскому деликатесу

Икра наравне с оливье, шампанским и елкой — один из главных символов Нового года. И чтобы праздник был еще краше, икра должна быть хорошей. Не слишком соленой, не трижды консервированной, без убойной дозы консервантов. Лучше всего — красной, но на самом деле совсем не обязательно. Икра менее благородных рыб, например щуки или судака, при умелом с ней обращении и правильном выборе может стать не менее эффектным праздничным угощением.

Мы составили краткий гид по икре, отвечающий на главные вопросы. Какая икра лучше — мелкая или крупная? В жестяной или стеклянной банке? Чем лососевая отличается от частиковой? Почему пробивная стоит меньше зернистой? И как сохранить загодя купленную развесную икру до Нового года?

Мы намеренно не включили в гид черную осетровую икру — это совершенно особая гурманская вселенная, стоящая заоблачных денег и отдельного вдумчивого исследования. Зато всю прочую — красную, рыжую, белую и желтую — попытались расставить на положенные ей места в икорной иерархии.

Поделиться:

Нашли ошибку?

—————————

похожие идеи

Красная икра: виды и вкусы

Надпись на банке «лососевая икра» мало что говорит о том, что внутри. Разве только о том, что перед вами икра не самого высшего сорта. На банках с продуктом премиального качества производитель обязан точно указывать вид рыбы, из которой эта икра была изъята.

Икра кеты — янтарного оттенка, с тонким «сливочным» вкусом, 5–7 мм в диаметре. Из-за нежной оболочки она буквально тает на языке и считается эталоном благородного икорного семейства.

Икра горбуши встречается в продаже чаще всего — из-за широкой популярности и плодовитости самой рыбы. У этой икры оранжевый окрас и сбалансированный, знакомый каждому вкус. Тут гнаться за размером не стоит: стандартные икринки горбуши — 3–5 мм, более крупные икринки — перезрелые, излишне плотные и суховатые. Часто икру горбуши пересаливают, перед покупкой ее лучше попробовать и покупать на развес.

Икра форели — мелкая, с булавочную головку, чуть слипшаяся, с легкой горчинкой и выразительным вкусом. Отлично сочетается со сливочными сырами, рисом в роллах — то есть выгоднее всего для нее нейтральная, неагрессивная продуктовая среда.

Икра кижуча и нерки — ее и можно опознать по насыщенному, темно-багряному оттенку, по размеру и внешнему виду она схожа с форелевой икрой, но горчинка в ней более выраженная, это икра на любителя. Этих рыб не разводят в неволе и по содержанию полезных веществ их «дикая» икра — рекордсмен среди лососевых.

Как хранить красную икру

Для хранения красной икры важны два условия — герметичность и холод. Если их соблюдать, то фабричная упаковка может быть любая: стекло, пластик, металл. Оценить качество красной икры лучше всего в стеклянной банке с металлической крышкой: икринки должны быть целыми, одинаковыми по размеру и цвету. Если баночку перевернуть, икринки должны медленно и равномерно сползти по стенкам, не слипаясь в комки. Если икра мгновенно стекает вниз, значит, в ней слишком много жидкости (которую специалисты называют джусом), ее или специально добавили в банку, чтобы увеличить вес, или это следствие того, что перед засолом икра была заморожена, а значит, потеряла весомую часть питательных достоинств.

Вскрыв металлическую баночку, икру из нее нужно сразу переложить в стеклянную посуду или пластиковый пищевой контейнер и плотно закрыть, чтобы избежать окисления. Но даже в таком виде после вскрытия заводской упаковки икра может хранится в холодильнике не больше недели. Развесную икру, упакованную при покупке в одноразовую пластиковую тару, нужно употребить в течение трех дней. Если же хочется сохранить такую икру подольше, ее лучше переложить в стерилизованную стеклянную банку, смазанную изнутри подсолнечным маслом, плотно закрыть и убрать в холодильник — так срок ее жизни можно продлить до двух недель.

Как выбирать красную икру

При покупке стоит обратить внимание на место производства: большую часть российской красной икры добывают на Дальнем Востоке — на Сахалине, Камчатке и в Хабаровском крае. В идеале икра должна быть переработана и расфасована в банки прямо на судах, но часто замороженные ястыки (то есть мешки-оболочки с икрой, непосредственно изъятые из рыбы) обрабатывают и пакуют в банки за тысячи километров от места вылова. Так что если местом производства указана Московская область, то икра, быть может, и была добыта на Сахалине, но она проделала долгий путь до банки в замороженном виде.

Еще один показатель — дата производства. Промысел икры лососевых рыб на Дальнем Востоке ведется строго с июня по сентябрь, икра с этими датами на упаковке будет максимально свежей. Но производители не всегда успевают справиться с потоком или просто хотят обеспечить себя доходом в течение года, поэтому морозят часть ястыков на будущее. Чаще всего такую «отложенную» икру размораживают, засаливают и упаковывают в банки в ноябре — декабре, когда спрос на нее перед Новым годом особенно высок. Криминального в этом ничего нет, разницу во вкусе многие даже не заметят, но если дата на упаковке зимняя, значит, перед вами предварительно замороженный продукт.

Какая еще бывает икра

Та икра, которая не относится ни к черной, ни к красной, называется частиковой (по способу добычи), также белой или желтой (из-за окраски). Частиковой называют не конкретный вид рыбы, а всю ту некрупную рыбу, которая попадается в сети с мелкими (или частыми) ячейками. На банках с такой икрой часто встречается слово «пробойная» — что это значит, можно прочитать в словаре в конце текста. А с кулинарной точки зрения пробойная икра — более плотная, как бы спаянная между собой, а не «зернышко к зернышку», как зернистая.

Щучья икра — самый распространенный вид частиковой икры. Стоит намного меньше красной, но при этом не уступает ей в яркости вкуса. Очень полезна из-за высокой концентрации йода и железа, особенно для людей с пониженным гемоглобином. Щучья икра, смешанная с мелко нарезанным зеленым или репчатым луком и сметаной, — отменная закуска, также из плотной икорной массы в русской кухне готовят оладьи икряники, добавляют ее в подливы и соусы (особенно сметанные и сливочные).

Икра минтая — не менее популярная разновидность частиковой икры. В натуральном виде она не слишком привлекательная: светло-желтый цвет, резкий запах, интенсивный соленый вкус, поэтому икру минтая часто облагораживают разными добавками — коптят, смешивают с травами, специями, майонезными и прочими соусами.

Икра леща пригодна в пищу даже в сыром виде, но обычно ее засаливают, вялят или жарят. У леща мелкие и рассыпчатые икринки легкого золотистого оттенка. Чаще всего икра продается в ястыках, готовить ее можно и в таком виде, но можно и самостоятельно очистить икринки: придется разорвать ястык, сначала удалить крупные фрагменты пленки, а затем осторожно протереть то, что осталось, через сито, ячейки которого должны быть чуть крупнее икринок.

Икра трески по своим питательным и вкусовым свойствам не уступает многим благородным видам икры. Она обладает нежным вкусом и практически не имеет рыбного оттенка. Ее часто используют в приготовлении салатов, закусок, а также она прекрасно сочетается с хлебом и всевозможными овощами. Икринки трески совсем мелкие и имеют персиковый цвет.

Икра мойвы имеет очень необычный, резкий и не самый однозначный вкус, поэтому в чистом виде ее практически не употребляют. Однако ее часто можно встретить в магазинах в виде пасты: икру мойвы смешивают с различными маслами или майонезом и продают в стеклянных баночках небольшого объема. Обязательно в пасту добавляют специи, которые приглушают специфический вкус.

Икра судака — мелкая, бежевого или бледно-желтого цвета. Икру судака засаливают преимущественно прямо в ястыках, но иногда готовят и пробивным способом, в консервах часто смешивают с растительным маслом и «улучшают» ее неяркий вкус специями. На Волге из икры судака готовят галаган — русский аналог боттарги. Сначала ястыки с икрой засаливают, затем прессуют под гнетом и вялят. Получается деликатесный продукт, который, как и боттаргу, можно добавлять по чуть-чуть в пасту и салаты.

Икорный словарь

Зернистая икра — освобожденная от ястыка до засола, икра самого высшего качества. Обычно черная или красная, для частиковых рыб такой трудоемкий способ обработки используется крайне редко.

Пробойная икра — протертая через специальное сито, пробой (грохот, грохотка), чтобы освободить цельные икринки от соединительной ткани и поврежденных зерен. Сам процесс называется пробивкой и в большинстве случаев используется для неблагородных, желтых видов икры. В отличие от зернистой икры пробойная икра более плотная, структура у нее «не зернышко к зернышку», а скорее пастообразная.

Путина — сезон, в течение которого производится промышленный вылов рыбы, совпадает с сезоном добычи икры. У лососевых рыб в это время происходят массовые миграции: они идут из моря в реки на нерест.

Ястык — тонкая, но прочная пленка, образующая мешок, в такой оболочке располагается икра в теле рыбы.

Ястычная икра — засаливается в ястыках и поступает в таком неочищенном виде в продажу. Эта икра самого низкого качества, значительно дешевле зернистой и пробойной. Речь не идет о том, что она несвежая, скорее — не идеальной зрелости. Когда у лососевых рыб бывает проблематично отделить икринки от пленки рыбьих яичников, приготовить ястычную икру — лучший выход ее сохранить. Также часто в ястыках продают мелкую частиковую икру, например воблы или селедки. Отделить икринки от ястыков уже невозможно — такую икру жарят, солят или вялят прямо в пленке, целыми пластами.

“,”mainEntityOfPage”:”https://eda.ru/media/produkt/ikra-chto-nuzhno-znat”,”@context”:”http://schema.org”,”name”:”Икра: что нужно знать “,”description”:”Гид по главному русскому деликатесу”}

Икра американского боуфина, пойманная в дикой природе, свежая, с низким содержанием соли

отлично…

Bowfin – не фантастическая икра, но цена за доллар не может быть лучше для обжор, таких как я.

Обожаю это…

Исключительно по цене.

Обожаю эту икру!

Исключительно по цене.

Купил попробовать

Абсолютно отвратительно! Купили на пробу, один укус и отдали кошкам! Лол серьезно.Им это понравилось. Как только я положила в рот, я почувствовала ужасный вкус мертвой рыбы. Но я рад, что знаю, что не получить его

Американский боуфин…

Икра американского боуфина

Американский боуфин…

Очень доволен качеством икры

Вкусно

Фантастический продукт по очень разумной цене

Боуфин

Отличная цена – из пяти, которые мы попробовали для празднования дня рождения, Bowfin занял второе место.Я заказал его снова.

Икра боуфинов

Приятное возвращение. Пробовал это раньше и не был разочарован. Моя любимая.

Очень хорошо!

В праздники наслаждались икрой боуфина! Кроме того, доставка была точно в срок!

Владелец

Лучшее место для икорного бара никогда не было

Американский боуфин…

Икра американского боуфина

Боуфин

Мягкий чистый вкус со слегка солоноватым послевкусием.Идеально подходит по цене.

Боуфин

Очень мелкая яичная икра с прекрасным вкусом и горьковатым послевкусием. Для недорогой черной домашней икры не ошибетесь

Товар очень хороший; сервис не очень!

Заказ № 15095, размещенный 08 декабря 2020 г. и доставленный по запросу 18 декабря 2020 г., вкусный и по справедливой цене. С другой стороны, заказ № 15129, размещенный на день или два позже и предназначенный в качестве подарка-сюрприза, который также должен быть доставлен 18 декабря 2020 г., как и просили, был отправлен немедленно.Несколько попыток просто подтвердить ошибку доставки привели только к самодовольным письмам по поводу правильной доставки Заказа № 15095. Раздражающий!

Хорошо…

Неплохо, особенно за такую ​​цену. Хорошо подавать с копченым лососем и крем-фреш. В следующий раз попробуйте на вареном перепелином яйце.

5…

отличная икра боуфин. В Луизиане рыбу называют "Гаспаргу"!

Сливочный, но немного рыбный.

Это очень хорошо по цене. Возможно, потому что это речная/озёрная рыба.

5…

Отличный продукт и сервис.

очень мало…

очень слабый вкус

Отличный, доступный заменитель Осетра

Я несколько раз получал ряды Bowfin от Caviar Star и никогда не был разочарован. Прекрасная текстура и размер яиц идеальны, а вкус великолепен.

5 звезд

Отличный товар и быстрая доставка!

Американский боуфин…

Икра американского боуфина

Любовь…

Лучшая американская икра по такой цене! Его используют Эрик Риперт и Эрмерил. Это не белуга, но вкусно.

Так здорово для…

Я вырос на Ближнем Востоке и был избалован иранской икрой. Будучи взрослой, я просто не мог позволить себе такую ​​роскошь. Я открыла для себя икру американского черного боуфина и влюбилась! Мало того, что это восхитительно на вкус, это еще и очень разумно.Мы с мужем раз или два в год делим между собой фунт. Разговор о роскошном обеде. Сопровождаем его тостами мельба, нарезанным яйцом, нарезанным луком и сметаной. Мы также делаем крем-фреш и лимонную цедру. Просто вкусно. Caviar Star отлично справляется с упаковкой и доставкой.

Хорошее качество…

Очень хорошее качество и приемлемая цена.

Американский боуфин…

Икра американского боуфина

Икра заказ…

Заказ прибыл вовремя, был приятным и холодным..Икра была замечательной….наслаждалась ею с бутылкой Дома и семьей на Рождество..закажу снова…

Американский боуфин…

Икра американского боуфина

Я понял…

Я получил то, что ожидал

Потрясающе

Отличный вкус!

Большое значение в…

Икра мелкая и нежная, с чуть солоноватым привкусом. Я бы купил его снова.

Всегда…

Всегда потрясающе

Американский боуфин…

Икра американского боуфина

Удивлен!

Много лет назад мы лакомились икрой на годовщину, но тогда она была в основном русской. Я попробовал Bowfin и был очень приятно удивлен тем, насколько он хорош, учитывая цену. Собираюсь насладиться им на нашу следующую годовщину.

Отлично подходит по цене, идеально подходит для развлечений

Хотя эта икра не содержит более сложных нот более изысканных брендов, эта икра прекрасна по цене.Счастливая среда для развлечения и отдыха, я очень доволен этим плавником. Потрясающий вкус и текстура, обязательно куплю снова.

Боуфин

На вкус точно такая же, как икра, которую я купила в Москве. Это был большой успех на званом ужине, и самое приятное то, что у меня все еще есть одна или две бутылки в запасе.

Фантастика по цене

Теперь я перехожу к развлекательной икре. У него нет такого орехового вкуса, как у хорошей Осетры, но по цене у него хороший вкус и цвет.Яйца немного меньше по размеру, но это не имеет большого значения, если вы украшаете закуски или кладете их в большое блюдо. Мне это понравилось больше, чем веслонос в качестве альтернативы осетру.

Неплохая цена.

Это очень вкусно. В то время как я не хотел бы ничего больше, чем слопать белугу ложкой из слоновой кости, подогреть блины, намазать крем-фреш и половник американского боуфина по 4 доллара за унцию! Хотя ему не хватает тонкой сложности настоящего осетра, текстура и шипение хорошие, а вкус весьма приятный.Я попробовал его бок о бок с американским боуфином, и он показал себя достойно. Вероятно, избегал бы дегустации одновременно с более тонкой икрой. По этой цене икра не обязательно должна быть роскошью.

Дискриминация видов икры COIBar-RFLP, эффективный молекулярный подход к обнаружению мошенничества в торговле икрой

Molecules. 2019 июль; 24(13): 2468.

Анна Мария Паппалардо

¹ Отдел биологических, геологических и экологических наук – Отделение биологии животных «М.La Greca», University of Catania, Via Androne 81, 95124 Catania, Italy

Agnese Petraccioli

² Факультет биологии, Неаполитанский университет им.

² Факультет биологии, Неаполитанский университет им. Федерико II, Via Cinthia Ed7, 80126 Неаполь, Италия

Венера Феррито

¹ Факультет биологических, геологических наук и наук об окружающей среде – Секция биологии животных «М.La Greca», Университет Катании, Via Androne 81, 95124 Катания, Италия

Даниэль Коццолино, академический редактор

¹ Факультет биологических, геологических наук и наук об окружающей среде – Секция биологии животных «M. La Greca», University of Catania, Via Androne 81, 95124 Катания, Италия

² Факультет биологии, Неаполитанский университет им. Федерико II, Via Cinthia Ed7, 80126 Неаполь, Италия

Поступила в редакцию 15 мая 2019 г.; Принято 3 июля 2019 г.

Лицензиат MDPI, Базель, Швейцария.Эта статья представляет собой статью в открытом доступе, распространяемую в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution (CC BY) (http://creativecommons.org/licenses/by/4. 0/). Эта статья цитировалась другими статьями в PMC. .

Abstract

Спрос на икру растет, как и ее цена на рынке. Из-за снижения производства настоящей икры осетровых рыб в качестве заменителей икры использовалась икра других видов рыб и других животных. На этикетках этих продуктов должен быть указан вид, от которого были получены яйца, но в некоторых случаях этикетка может вводить в заблуждение.В этом контексте идентификация видов с помощью анализа ДНК имеет решающее значение для отслеживания и аутентификации продуктов из икры. В этой работе мы применили процедуру COIBar-RFLP для получения видовоспецифических рестрикционных моделей эндонуклеаз, полезных для различения видов «икры». Просторованная икра продуктов была идентифицирована как возникающая из восьми видов: Acipenser Transmonentanus , A. Gueldenstaedtii , A. BaeriiStaEdus , A. Baerii , Mallotus Villosus , Huso Huso , Cyclopterus Lumpus и Эумикротремус орбис . Результаты показали, что 14% исследованных икорных продуктов имеют этикетку, не указывающую на вид, от которого произошли яйца. Фермент рестрикции Mbo I дает специфические профили, различающие восемь видов, подтверждая, что COIBar-RFLP является полезным подходом для рутинного скрининга морепродуктов благодаря простоте и быстроте выполнения, поскольку результаты скрининга могут быть получены в течение 7 часов. , минуя необходимость секвенирования.

Ключевые слова: икра , видовая идентификация, ДНК-штрихкодирование, COIBar-RFLP

1.Введение

Икра осетровых рыб, известная как «икра», представляет собой один из самых ценных деликатесов на мировом рынке продуктов питания. С 1997 года все виды осетровых были включены в Приложения к Конвенции о международной торговле видами, находящимися под угрозой исчезновения (СИТЕС). С тех пор идентификация видов осетровых является задачей первостепенной важности [1]. В стандарте на икру осетровых рыб [2], принятом в 2010 г. , указано, что икра – это продукт, изготовленный из икры рыб, обработанной поваренной солью, семейства осетровых (включая роды Acipenser , Huso , Pseudoscaphirhynchus и Скафиринх ).Что касается маркировки коммерческих продуктов, термин «икра» должен использоваться только для икры осетровых рыб, а этикетки должны включать общепринятое название вида, например, Beluga для Huso huso , Osetra для Acipenser gueldenstaedtii/A. persicus и севруга для Acipenser transmontanus . Кроме того, икорные продукты включают не только упомянутую выше настоящую икру, но и заменители икры, полученные из икры других видов рыб или других животных организмов, а также ряд других продуктов, называемых «икрой», которые не имеют следов рыбьей икры, но имитируют вкус икры. икра [3].Конечно, цены на различные виды икры значительно различаются, и только настоящая икра считается дорогим продуктом роскоши (продается примерно по 900–1500 евро за килограмм в зависимости от вида осетровых, но икра белуги также продавалась по до 4500 евро за килограмм). Заменители икры продаются по более доступным ценам (как правило, менее 200 евро за килограмм). Ограниченное производство настоящей икры из-за резкого сокращения аборигенных популяций осетровых и глобального растущего спроса на икорные продукты привело к увеличению как аквакультурного производства осетровых рыб и икры, с одной стороны, так и использования заменителей икры, с другой. другой.Фактически к последним относится икра как минимум 38 неосетровых видов рыб [3]. В этом контексте существует высокий риск мошенничества, браконьерства и незаконной торговли икрой, и, хотя объем незаконной торговли неизвестен, по оценкам Секретариата СИТЕС, уровни браконьерства намного превышают легальный промысел. Европейские страны особенно заинтересованы в этой проблеме в связи с тем, что ЕС является крупнейшим в мире импортером икры из стран-экспортеров, таких как Китай, на долю которого в 2016 г. приходилось 85% импорта ЕС [4].

В настоящее время растущий объем научной литературы по аутентификации морепродуктов показывает, что высокоавтоматизированные биомолекулярные методы могут значительно улучшить идентификацию видов в переработанных морепродуктах. Это особенно актуально в связи с промышленной переработкой, которая приводит к потере идентифицируемых морфологических признаков вида [5,6,7]. Наряду с достижениями в крупномасштабных интегрированных молекулярных технологиях было разработано множество анализов, основанных на анализе ДНК, для идентификации видов в нескольких пищевых продуктах.Среди них штрих-кодирование ДНК, направленное на фрагмент размером около 650 п.н. гена митохондриальной цитохромоксидазы I (COI), в настоящее время используется для дифференциации и дискриминации более 98% видов животных [8,9,10,11,12, 13,14,15,16,17,18,19] и был одобрен для судебной идентификации видов [20]. Тем не менее, большинство методов на основе ДНК, принятых для аутентификации видов рыб, ориентированы на высокую чувствительность и короткое время анализа, чтобы сделать идентификацию видов быстрой и легкой для рутинного скрининга для обнаружения неправильной маркировки морепродуктов [21,22,23,24]. ].

ПЦР-ПДРФ, например, представляет собой простой, недорогой, надежный и многообещающий метод, поскольку полиморфные маркеры генерируются путем ПЦР-амплификации с последующим рестрикционным расщеплением эндонуклеазами [25,26,27,28]. Недавно два объединенных подхода штрих-кодов COI и ПЦР-ПДРФ были объединены в новую молекулярную стратегию (COIBar-RFLP, полиморфизм длины рестрикционного фрагмента штрих-кода цитохромоксидазы I) для идентификации видов рыб в переработанных морепродуктах [29,30,31, 32]. ПЦР-ПДРФ гена цитохрома b уже использовался для различения видов икры, но показал ограничения в дифференциации близкородственных видов, таких как A.gueldenstaedti , A. baerii , A. persicus и A. naccarii [33]. Основываясь на приведенных выше соображениях, чтобы оценить эффективность COIBar-RFLP в идентификации видов икры, мы сначала применили обычное ДНК-штрих-кодирование для проверки точности маркировки нескольких «икорных» продуктов, а затем применили молекулярную стратегию COIBar-RFLP, чтобы сократить оба анализа. затраты и время на определение видов рыб для наиболее распространенных товарных икорных продуктов.

2.Результаты

2.1. COI Sequences

Последовательности штрих-кода COI для каждого вида были одинаковой длины, от 646 до 664 п. н. между видами, без стоп-кодонов, и представляли собой функциональные митохондриальные последовательности. Поэтому NUMT (последовательности ядерной ДНК, происходящие из митохондриальной ДНК) не были секвенированы (NUMT позвоночных обычно меньше 600 п.н.) [34]. Дерево NJ (), построенное с использованием последовательностей двадцати видов, загруженных из GenBank (), и последовательностей, полученных из коммерческих образцов, идентифицированных поиском BLAST (), подтвердило принадлежность восьми видов икры к трем семействам: Acipenseridae ( H .Huso , A. TransmonTanus , A. Gueldenstaeedtii , A. Stellattus и A. Baerii и A. Baerii ), Cyclopteridae ( Cyclopterus Lumpus и EUMICROTREMUS ORBIS ) и OSMERIDAE ( MALLOTUS Villosus ). Узлы, соединяющие последовательности, принадлежащие одному и тому же виду в дереве, хорошо поддерживаются высокими значениями начальной загрузки (> 70%).

COI-neighbor-joining (CO-NJ) дендрограмма, показывающая взаимосвязь неизвестных последовательностей образцов (X) с проверенными эталонными последовательностями штрих-кода. Цифры над узлами представляют бутстреп-анализ после 1000 повторов.

Таблица 1

Номера доступа GenBank последовательностей COI эталонной икры и замещающих видов рыб.

9″,”term_text”:”FJ809724″}}FJ809724

Виды	Общее название	Регистрационный номер GenBank	Ссылки
Осетр бэрии	Сибирский осетр	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KP833625″,”term_id”:”806639229″,”term_text”:”KP833625″}}KP833625	Неопубликовано
Acipenser brevirostum	Белуга	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”EU523870″,”term_id”:”186883008″,”term_text”:”EU523870″}}EU523870	Хьюберт и др. 2008
Acipenser dabryanus	Янцзинский осетр	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KP218558″,”term_id”:”926808708″,”term_text”:”KP218558″}}KP218558	Ли и др. 2015
Осетр фульвесенс	Озерный осетр	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”EU524392″,”term_id”:”186884052″,”term_text”:”EU524392″}}EU524392	Хьюберт и др. 2008
Acipenser gueldenstaedtii	Русский осетр	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”JQ623904″,”term_id”:”383281006″,”term_text”:”JQ623904″}}JQ623904	Неопубликовано
Осетр медирострис	Зеленый осетр	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”EU523879″,”term_id”:”186883026″,”term_text”:”EU523879″}}EU523879	Хьюберт и др. 2008
Аципенсер микадой	Сахалинский осетр	NC031188	Неопубликованные
Acipenser naccarii	Адриатический осетр	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KJ552424″,”term_id”:”610488143″,”term_text”:”KJ552424″}}KJ552424	Гейгер и др. 2014
Аципенсер голый	Шип	JQ 623905	Неопубликованная
Осетровый оксиринх	Атлантический осетр	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KX145066″,”term_id”:”1049486893″,”term_text”:”KX145066″}}KX145066	Неопубликовано
Осетр персидский	Персидский осетр	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”FJ809724″,”term_id”:”226	Неопубликовано
Аципенсер рутенс	Стерлядь	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”HQ960576″,”term_id”:”321118439″,”term_text”:”HQ960576″}}HQ960576	Неопубликовано
Acipenser Schrenckii	Осетр амурский	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KP218530″,”term_id”:”926808652″,”term_text”:”KP218530″}}KP218530	Ли и др. 2015
Осетр китайский	Китайский осетр	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KP218545″,”term_id”:”926808682″,”term_text”:”KP218545″}}KP218545	Ли и др. 2015
Осетр звездчатый	Севрюга	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KC500131″,”term_id”:”460418230″,”term_text”:”KC500131″}}KC500131	Кескин и Атар 2013
Аципенсер стерилизованный	Осетр обыкновенный	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KJ552406″,”term_id”:”610488087″,”term_text”:”KJ552406″}}KJ552406	Гейгер и др. 2014
Осетр трансмонтанский	Белуга	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”EU523889″,”term_id”:”186883046″,”term_text”:”EU523889″}}EU523889	Хьюберт и др. 2008
Huso Huso	Белуга	EHSI214-06 *	Неопубликовано
Маллотус ворсинчатый	Мойва	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”HQ712650″,”term_id”:”321402270″,”term_text”:”HQ712650″}}HQ712650	Макленбург и другие. 2011
Cyclopterus lumpus	Бородач	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MG421955″,”term_id”:”1489968750″,”term_text”:”MG421955″}}MG421955	Неопубликовано
Eumicrotremus orbis	Тихоокеанский колючий пинагор)	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”JQ354090″,”term_id”:”382934976″,”term_text”:”JQ354090″}}JQ354090	Неопубликовано

Таблица 2

Образцы икры и заменителя икры, включенные в данную работу. Жирным шрифтом неправильно маркированы морепродукты.

0″,”term_id”:”1793598530″,”term_text”:”MK

0″}}MK

0

1″,”term_id”:”1793598532″,”term_text”:”MK

1″}}MK

1

2″,”term_id”:”1793598534″,”term_text”:”MK

2″}}MK

2

3″,”term_id”:”1793598536″,”term_text”:”MK

3″}}MK

3

4″,”term_id”:”1793598538″,”term_text”:”MK

4″}}MK

4

5″,”term_id”:”1793598540″,”term_text”:”MK

5″}}MK

5

6″,”term_id”:”1793598542″,”term_text”:”MK

6″}}MK

6

код	Код	обработанные рыбные продукты	N ° Образец	объявленные виды	GenBank Access N °	видов соответствует взрыву	соответствующий присоединение от взрыва	% Identity
x1
x1
мойва	3	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“текст”:”MK	9″,”term_id”:”1793598506″,”term_text”:”MK	9″}}MK	9	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”FJ205579″,”term_id”:”208436055″,”term_text”:”FJ205579″}}FJ205579	99. 70
X2	мойва	3	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“текст”:”MK0″,”term_id”:”1793598507″,”term_text”:”MK0″}}MK0	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”FJ205579″,”term_id”:”208436055″,”term_text”:”FJ205579″}}FJ205579	99,24
X3	пинагор	3	Cyclopterus lumpus	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK1″,”term_id”:”1793598508″,”term_text”:”MK1″}}MK1	Cyclopterus lumpus	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KJ204826″,”term_id”:”607345605″,”term_text”:”KJ204826″}}KJ204826	99. 85
X4	икра белая	3	Осетр трансмонтанский	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK7″,”term_id”:”1793598524″,”term_text”:”MK7″}}MK7	Осетр трансмонтанский	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KX145032″,”term_id”:”1049486825″,”term_text”:”KX145032″}}KX145032	99,85
X5	мойва черная	3	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“текст”:”MK2″,”term_id”:”1793598509″,”term_text”:”MK2″}}MK2	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”FJ205579″,”term_id”:”208436055″,”term_text”:”FJ205579″}}FJ205579	99. 39
X6	пинагор	3	Cyclopterus lumpus	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“текст”:”MK3″,”term_id”:”1793598510″,”term_text”:”MK3″}}MK3	Cyclopterus lumpus	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KJ204826″,”term_id”:”607345605″,”term_text”:”KJ204826″}}KJ204826	99,54
X7	мойва	3	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK4″,”term_id”:”1793598511″,”term_text”:”MK4″}}MK4	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”FJ205579″,”term_id”:”208436055″,”term_text”:”FJ205579″}}FJ205579	99. 09
X8	икра	3	не указано	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“текст”:”MK8″,”term_id”:”1793598526″,”term_text”:”MK8″}}MK8	Eumicrotremus orbis	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”JQ354090″,”term_id”:”382934976″,”term_text”:”JQ354090″}}JQ354090	96,91
X9	икра	3	не указано	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK5″,”term_id”:”1793598512″,”term_text”:”MK5″}}MK5	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”FJ205579″,”term_id”:”208436055″,”term_text”:”FJ205579″}}FJ205579	99. 55
X10	мойва красная	3	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK6″,”term_id”:”1793598513″,”term_text”:”MK6″}}MK6	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”FJ205579″,”term_id”:”208436055″,”term_text”:”FJ205579″}}FJ205579	99,09
X11	мойва черная	3	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK6″,”term_id”:”1793598513″,”term_text”:”MK6″}}MK6	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”FJ205579″,”term_id”:”208436055″,”term_text”:”FJ205579″}}FJ205579	99. 09
X12	икра белая	3	Осетр трансмонтанский	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK9″,”term_id”:”1793598528″,”term_text”:”MK9″}}MK9	Осетр трансмонтанский	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KX145032″,”term_id”:”1049486825″,”term_text”:”KX145032″}}KX145032	99,85
X13	белая икра	3	Осетр трансмонтанский	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK	Осетр трансмонтанский	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KX145032″,”term_id”:”1049486825″,”term_text”:”KX145032″}}KX145032	99. 54
X14	икра белая	3	Осетр трансмонтанский	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK9″,”term_id”:”1793598528″,”term_text”:”MK9″}}MK9	Осетр трансмонтанский	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KX145032″,”term_id”:”1049486825″,”term_text”:”KX145032″}}KX145032	99,85
X15	мойва	3	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK7″,”term_id”:”1793598514″,”term_text”:”MK7″}}MK7	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”FJ205579″,”term_id”:”208436055″,”term_text”:”FJ205579″}}FJ205579	98. 94
X16	пинагор	3	Cyclopterus lumpus	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK8″,”term_id”:”1793598515″,”term_text”:”MK8″}}MK8	Cyclopterus lumpus	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KJ204826″,”term_id”:”607345605″,”term_text”:”KJ204826″}}KJ204826	99,69
X17	пинагор	3	Cyclopterus lumpus	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“текст”:”MK9″,”term_id”:”1793598516″,”term_text”:”MK9″}}MK9	Cyclopterus lumpus	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KJ204826″,”term_id”:”607345605″,”term_text”:”KJ204826″}}KJ204826	99. 38
X18	мойва красная	3	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK0″,”term_id”:”1793598517″,”term_text”:”MK0″}}MK0	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”FJ205581″,”term_id”:”208436059″,”term_text”:”FJ205581″}}FJ205581	98,94
X19	икра	3	не указано	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK1″,”term_id”:”1793598518″,”term_text”:”MK1″}}MK1	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”FJ205581″,”term_id”:”208436059″,”term_text”:”FJ205581″}}FJ205581	98. 79
X20	мойва	3	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK2″,”term_id”:”1793598519″,”term_text”:”MK2″}}MK2	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”FJ205579″,”term_id”:”208436055″,”term_text”:”FJ205579″}}FJ205579	98,79
X21	икра белуги	2	Huso Huso	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK	Huso Huso	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“текст”:”AY442351″,”term_id”:”38304799″,”term_text”:”AY442351″}}AY442351	99. 69
X22	икра севрюга	2	Осетр звездчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“текст”:”MK	Осетр звездчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”HQ960585″,”term_id”:”321118457″,”term_text”:”HQ960585″}}HQ960585	99,08
X23	икра осциетры	2	Acipenser gueldenstaedtii	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK	Acipenser gueldenstaedtii	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KC500088″,”term_id”:”460418144″,”term_text”:”KC500088″}}KC500088	99. 85
X24	черная икра	3	Осетр бэрии	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK	Осетр бэрии	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KM286420″,”term_id”:”697736529″,”term_text”:”KM286420″}}KM286420	99,85
X25	икра	3	не указано	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK3″,”term_id”:”1793598520″,”term_text”:”MK3″}}MK3	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”FJ205581″,”term_id”:”208436059″,”term_text”:”FJ205581″}}FJ205581	98. 49
X26	мойва красная	3	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK4″,”term_id”:”1793598521″,”term_text”:”MK4″}}MK4	Маллотус ворсинчатый	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”FJ205579″,”term_id”:”208436055″,”term_text”:”FJ205579″}}FJ205579	98,64
X27	пинагор	3	Cyclopterus lumpus	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK5″,”term_id”:”1793598522″,”term_text”:”MK5″}}MK5	Cyclopterus lumpus	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KJ204826″,”term_id”:”607345605″,”term_text”:”KJ204826″}}KJ204826	99. 54
X28	пинагор	3	Cyclopterus lumpus	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“текст”:”MK9″,”term_id”:”1793598516″,”term_text”:”MK9″}}MK9	Cyclopterus lumpus	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KJ204826″,”term_id”:”607345605″,”term_text”:”KJ204826″}}KJ204826	99,38
X29	икра осциетры	3	Acipenser gueldenstaedtii	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“текст”:”MK	Acipenser gueldenstaedtii	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KC500088″,”term_id”:”460418144″,”term_text”:”KC500088″}}KC500088	99. 85
X30	икра бери	3	Осетр бэрии	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK	Осетр бэрии	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KM286420″,”term_id”:”697736529″,”term_text”:”KM286420″}}KM286420	99,69
X31	пинагор	3	Cyclopterus lumpus	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”MK6″,”term_id”:”1793598523″,”term_text”:”MK6″}}MK6	Cyclopterus lumpus	{“type”:”entrez-нуклеотид”,”attrs”:{“text”:”KJ204826″,”term_id”:”607345605″,”term_text”:”KJ204826″}}KJ204826	99. 38

2.2. COIBar-RFLP

ПЦР-амплификация митохондриального гена COI исследованных видов дала фрагмент переменного размера в диапазоне от 700 до 760 п.н. Было обнаружено, что уникальные схемы рестрикции Mbo I для каждого вида удовлетворительно различают все восемь протестированных видов. Предварительный скрининг подходящих рестрикционных ферментов, созданных с использованием переназначения EMBOSS (European Molecular Biology Open Software Suite), показал, что только Mbo I смог одновременно различить разные проверенные виды рыб, исследованных в этом исследовании.Как показано на , расщепление продукта ПЦР привело к специфическим профилям для восьми видов: E. orbis имеет три сайта рестрикции Mbo I и четыре фрагмента размером около 300, 200, 150 и 100 п.н. Пять видов имеют два сайта рестрикции, продуцирующие фрагменты 410, 200 и 120 п.н. в A. stellatus ; 420, 140 и 100 п.н. в A. gueldenstaedtii ; 380, 210 и 100 п. н. у A. transmontanus; 430, 150 и 110 п.н. в H. huso и, наконец, 480, 220 и 130 п.н. в C.комок . Два вида имеют только один сайт рестрикции Mbo I, дающий 420 и 130 п.н. у A. baerii и 510 и 170 п.н. у M. villosus .

Пример идентификации COIBar-RFLP на 3% агарозном геле икры и замещающих видов икры с рестрикцией MboI гена цитохром с оксидазы I. M = маркер молекулярной массы (Trackit ^TM ДНК-лестница 100 п.н., Invitrogen). Все эксперименты по перевариванию проводили в трех экземплярах.

3. Обсуждение

Результаты, полученные в этом исследовании, дают представление об идентификации видов в коммерческих продуктах икры с использованием штрих-кодирования COI ДНК. Было показано, что COIBar-RFLP, метод, объединяющий объединенный штрих-код COI и методы полиморфизма длины случайного фрагмента, эффективно различает виды с использованием специфических профилей рестрикционного фермента Mbo I. Последовательности генов COI позволили идентифицировать четыре вида Acipenser , H.huso и три вида заменителей икры, все они образуют хорошо поддерживаемые кластеры на дереве штата Нью-Джерси. В связи с этим наши данные показали включение H. huso в род Acipenser , как уже было предложено Birstein et al. [35] на основе последовательностей Cytb. Аутентификация видов икры является как проблемой, так и проблемой в борьбе с незаконной торговлей икрой и осетровыми продуктами, поскольку значительная часть видов осетровых классифицируется МСОП как «находящиеся под угрозой исчезновения» в результате ухудшения среды обитания осетровых и чрезмерной эксплуатации икры. производства [36].По этим причинам резолюция 12.7 (Rev. CoP17) Конференции сторон СИТЕС «Сохранение и торговля осетровыми и веслоносами» установила правила контроля за торговлей и рекомендовала, чтобы диапазон экспортных квот на икру на государственном уровне и мясо видов Acipenseriformes. Кроме того, также были разработаны руководящие принципы универсальной системы маркировки для торговли и идентификации икры. С другой стороны, наше исследование других брендов показало, что 14% исследованных продуктов из икры отсутствовали на этикетке, указывающей название вида, от которого произошли яйца.Следует отметить, что с помощью COIBar-RFLP нам удалось идентифицировать вид M. villosus почти во всех продуктах с неправильной маркировкой, а один полученный продукт даже содержал вид E. orbis , принадлежащий Cyclopteridae, которого нет в списке. известных видов рыб, используемых для производства икры [3]. Можно предположить, что вид, обычно используемый в качестве заменителя икры, пинагор, Cyclopterus lumpus , еще один Cyclopteridae, был неправильно идентифицирован, что привело к непреднамеренному мошенничеству.Однако это не объясняет наш случай, потому что продукт был помечен как «икра», а не как «икра пинагора». Точная идентификация видов очень важна для регулирования торговли ценными продуктами животного происхождения, такими как осетровая икра. Наиболее известны и высоко ценятся икра белуги из белуги ( H. huso ), осетра из русского осетра ( A. gueldenstaedtii ), севрюги из севрюги ( A. stellatus ). [4]. Однако большая часть икры, представленной сегодня на рынке, относится к наиболее распространенным видам, таким как белый осетр ( A.transmontanus ) или более ценный сибирский осетр ( A. baerii ). Все эти виды были правильно указаны на этикетке исследованных здесь икорных продуктов, вероятно, потому, что они получены из отслеживаемой аквакультуры, как указано на веб-сайте продавца. В связи с этим, хотя наши данные показывают, что настоящие продукты на основе икры были правильно маркированы, браконьерство и незаконная торговля видами осетровых были признаны во всем мире [37,38], несмотря на торговые ограничения, наложенные СИТЕС.В нашем исследовании наиболее распространенным видом, обнаруженным в икорных продуктах, продаваемых в супермаркетах, была мойва M. villosus , идентифицированная как в правильно маркированных продуктах (объявление слов «заменитель икры», как того требует итальянское законодательство, ст. 9 Рег. .1169/11) и продукты с неправильной маркировкой (только икра). Производство заменителей и икры икры оценивается примерно в 50 000 т в год ^-1 в 2011 году из-за высокого спроса на недорогую икру со стороны новых потребителей [3,39].Потребление продукции из заменителей икры в последние годы значительно выросло среди крупных ритейлеров, а икра мойвы является наименее дорогой среди заменителей настоящей икры, так как ее цена на 1/3 ниже икры пинагора. Таким образом, продукт, не соответствующий правилам маркировки, будет легко рассматриваться как коммерческое мошенничество.

В этом контексте идентификация видов рыб с использованием молекулярного подхода является единственным способом определить, имело ли место коммерческое мошенничество.Среди различных методологий молекулярной идентификации ПЦР-ПДРФ является одной из наиболее часто используемых для различения видов рыб [40]. Однако следует отметить, что этот метод очень полезен только тогда, когда коммерческие продукты содержат один вид. В случае образцов со смешанными видами необходимо использовать другие методы для таксономической идентификации, такие как секвенирование нового поколения или видоспецифичная мультиплексная ПЦР. Людвиг [33, 37, 41] рекомендовал секвенирование гена Cytb и RFLP для различения видов икры, но авторы отметили ограничения этого молекулярного маркера для дифференциации близкородственных видов, таких как A.gueldenstaedtii, A. baerii, A. persicus и , A. naccarii (российский сложный вид). Совсем недавно Trocchia et al. использовали ПЦР-ПДРФ Cytb. [42], чтобы отличить A. baeri от видов-заменителей икры, таких как C. lumpus, M.villosus и Trisopterus minutus minutus . В этом случае Cytb RFLP давал рестрикционный паттерн, полезный для дифференциации четырех видов, но различение внутри рода Acipenser не исследовалось.В отличие от ПЦР-ПДРФ Cytb, используемого другими исследователями, наши результаты, основанные на COIBar-RFLP, позволили нам одновременно различать не только четыре вида Acipenser , в том числе A. baerii и A. gueldenstaedtii , принадлежащие к российской сложные виды и H. huso , а также три вида заменителей икры.

Недавно область штрих-кода COI была объединена с анализом плавления с высоким разрешением (Bar-HRM) для различения видов рыб [43].Однако эта методология требует опыта разработки праймеров для мини-штрих-кодов и проверки их эффективности и специфичности. И наоборот, COIBar-RFLP не требует высокого уровня знаний в области молекулярной генетики, имеет очень хорошие характеристики с точки зрения простоты и скорости выполнения (результаты скрининга можно получить за 7 часов) и поощряет дальнейшую проверку и применение. Мы могли бы исследовать создание базы данных профилей рестрикционных ферментов, которая будет использоваться для проверки этого метода, сначала идентифицируя виды с помощью шаблона полос RFLP, а затем подтверждая подлинность видов с помощью секвенирования ДНК.После валидации COIBar-RFLP можно будет использовать для рутинной проверки подлинности видов морепродуктов.

4. Материалы и методы

4.1. Отбор проб

В 2018 году на нескольких итальянских рынках и онлайн-сайтах был куплен в общей сложности 31 вид коммерческой икры. остальные продукты маркировались только как икра. Для каждого коммерческого бренда было случайным образом выбрано до трех яиц, всего 90 образцов, которые были независимо обработаны для исследования присутствия нескольких видов в продуктах из икры ().Каждый образец сохраняли в маркированных пробирках объемом 1,5 мл, наполненных 95% этанолом, хранили при температуре -20 °C и впоследствии обрабатывали в лаборатории.

4.2. Амплификация штрих-кода COI, секвенирование и анализ данных

Полную геномную ДНК экстрагировали из рыбьей икры с использованием набора тканей DNeasy (Qiagen, Hilden, Германия) в соответствии с инструкциями производителя с некоторыми изменениями.

Амплификацию цитохромоксидазы I проводили в объемах 20 мкл с использованием хвостовых праймеров M13 VF2_t1 и FishR2_t1, описанных Ivanova et al. 9 [44] и условия ПЦР, описанные Паппалардо и Феррито [29]. Двухцепочечные продукты проверяли с помощью электрофореза в агарозном геле, визуализировали с помощью SYBR ^® Safe (Thermo Fisher, Уолтем, Массачусетс, США) и отображали с помощью «Safe Imager ^TM 2.0 Blue Light Transilluminator» (Thermo Fisher, Уолтем, Массачусетс, США). . Затем все продукты ПЦР очищали с помощью набора для очистки ПЦР QIAquick (Qiagen), а затем секвенировали в прямом и обратном направлении с помощью Genechron (http://www.Genechron.it/index.php/sanger-sequencing) с использованием прямого и обратного праймеров M13. Полученные хроматограммы последовательностей проверяли визуально, собирали и впоследствии запрашивали по общедоступным базам данных Basic Local Alignment Search Tool (BLAST, NCBI, Bethesda, MD USA) и базе данных Barcode of Life (BOLD, http://www.boldsystems.org) , с выбранными записями штрих-кода на уровне вида [45]. Все последовательности, полученные из этого исследования, были депонированы в GenBank (http://www. ncbi.nlm.nih.gov/genbank/) ().Последовательности были выровнены с использованием настроек по умолчанию в программном обеспечении ClustalX [46], и выравнивание было изменено вручную в BioEdit (http://www.mbio.ncsu.edu/bioedit/bioedit.html). Программное обеспечение MEGA v 6.0 (Институт биодизайна, Аризона, Массачусетс, США) [47] использовалось для построения дендрограммы соседнего соединения COI (NJ) с использованием расстояния K2P. Чтобы проверить последовательности COI видов, еще двадцать последовательностей COI были загружены из GenBank и BOLD SYSTEMS (http://www.boldsystems.org) и использованы для построения дерева NJ ().Значения начальной загрузки были рассчитаны для 1000 повторов [48]. Неоднозначные последовательности были обрезаны после выравнивания.

4.3. COIBar-RFLP

Ферменты рестрикции и их сайты рестрикции были предварительно обнаружены с помощью программного обеспечения «Remap» (http://emboss.bioinformatics.nl) для сканирования нескольких проверенных последовательностей штрих-кодирования ДНК (650 п. н.) эталонных видов икры, загруженных из GenBank. . Для проведения анализа COI-RFLP были выбраны следующие ферменты: Hpa II (C*CGG), Hinf I (G*ANTC), Mbo I (*GATC) и Rsa I (GT*AC ) (Новая Англия Биолабс, Инк., Ипсвич, Массачусетс, США). Затем продукты ПЦР со штрих-кодом COI образцов, полученных из Acipenser baerii Brandt, 1869, A. gueldenstaedtii Brandt, 1833, A. stellatus Pallas, 1771, A. transmontanus Richardson, 1837 L., 1758, Mallotus villosus (Müller 1776), Cyclopterus lumpus Linnaeus, 1758 и Eumicrotremus orbis (Günther, 1861) расщепляли выбранными рестриктазамиДля проведения реакции расщепления использовали общий объем 15 мкл, содержащий 1 мкл ферментного буфера, 13 мкл неочищенного продукта ПЦР и 1 мкл каждой эндонуклеазы (по 10 ЕД каждой). Реакционную смесь инкубировали на водяной бане в течение 1 ч при 37°С. Расщепленные продукты ПЦР затем разделяли на 2,5% агарозном геле и определяли их размеры путем сравнения с ДНК-лестницей Trackit ^TM на 100 п. н. (Invitrogen). Образец полос, полученный из проверенных образцов, был использован для идентификации неизвестных коммерческих образцов (рисунок не показан).

5. Выводы

Методы на основе ДНК и широкий спектр разработанных методологий стали наиболее точными молекулярными инструментами для идентификации видов рыб. Однако при выборе метода для использования в регулярных программах скрининга следует учитывать несколько факторов, включая сложность, стоимость и область применения [49]. COIBar-RFLP использовался для различения видов большого количества таксономических групп, включая рыб на разных стадиях их жизненного цикла (икра, личиночная и взрослая особи), а также в виде целых или обработанных образцов, доказывая, что это надежный метод борьбы с коммерческими мошенничество, основанное на непреднамеренной или преднамеренной замене видов в морепродуктах [29,30,31,32].Кроме того, этот метод также может быть успешно применен для борьбы с незаконным, несообщаемым и нерегулируемым промыслом таких видов, находящихся под угрозой исчезновения, как осетровые.

Вклад авторов

А.М.П. и В.Ф. задумал и спроектировал эксперименты; А.М.П. и А.П. провели эксперименты; А.М.П. и Т.С. проанализировали данные; А.М.П., ​​Т.С. и В.Ф. написал газету.

Финансирование

Это исследование финансировалось Университетом Катании [номер гранта № 22722132134].

Конфликт интересов

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Сноски

Наличие образца: Недоступно.

Ссылки

1. Raymakers C. CITES, Конвенция о международной торговле видами дикой фауны и флоры, находящимися под угрозой исчезновения: ее роль в сохранении Acipenseriformes. Дж. Заявл. Ихтиол. 2006; 22:53–65. doi: 10.1111/j.1439-0426.2007.00929.x. [CrossRef] [Google Scholar] 2. CAC, Codex Alimentarius Commission Codex Stan 291-2010.Стандарт на осетровую икру. [(по состоянию на 5 июля 2019 г.)]; Доступно в Интернете: www.fao.org.3. Бронзи П., Розенталь Х. Производство и маркетинг осетровых и икры в настоящем и будущем: обзор мирового рынка. Дж. Заявл. Ихтиол. 2014; 30:1536–1546. doi: 10.1111/jai.12628. [CrossRef] [Google Scholar] 4. EUMOFA, Рынок икры Производство, торговля и потребление в ЕС и за его пределами. [(по состоянию на 5 июля 2019 г.)]; Доступно на сайте: www.eumofa.eu.5. Паппалардо А.М., Гуарино Ф., Рейна С., Мессина А., Де Пинто В. Географически широко распространенная идентификация штрих-кода рыбы-меч: пример ее применения. ПЛОС ОДИН. 2011;6:e25516. doi: 10.1371/journal.pone.0025516. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 6. Паппалардо А.М., Феррито В. Идентификация видов с помощью штрих-кода ДНК выявляет неправильную маркировку переработанных продуктов из камбалы на рынках южной Италии. Рыбы. Рез. 2015; 164: 153–158. doi: 10.1016/j.fishres.2014.11.004. [CrossRef] [Google Scholar] 7. Паппалардо А.М., Копат К., Феррито В., Грассо А., Ферранте М. Содержание тяжелых металлов и идентификация молекулярных видов в консервированном тунце: взгляд на безопасность пищевых продуктов для человека. Мол. Med. Отчет 2017; 15: 3430–3437. doi: 10.3892/mmr.2017.6376. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 8. Хеберт П.Д.Н., Цивинска А., Болл С., деВард Дж. Р. Биологическая идентификация с помощью штрих-кодов ДНК. проц. Рой. Soc. Лондон. Б. 2003; 270:313–321. doi: 10.1098/rspb.2002.2218. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 9. Hebert P.D.N., Ratnasingham S., deWaard J.R. Штрих-кодирование жизни животных: дивергенция субъединицы 1 цитохром-с-оксидазы среди близкородственных видов. проц. Рой. Soc. Лондон. Б. 2003; 270:S96–S99. doi: 10.1098/rsbl.2003.0025. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]10. Пакуин Р., Хедин М. Сила и опасности «молекулярной таксономии»: тематическое исследование безглазых и находящихся под угрозой исчезновения Cicurina (Araneae: Dictynidae) из пещер Техаса. Мол. Экол. 2004; 13:3239–3255. doi: 10.1111/j.1365-294X.2004.02296.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 11.Уорд Р.Д., Землак Т.С., Иннес Б.Х., Ласт П.Р., Хеберт П. Д.Н. ДНК-штрихкодирование австралийских видов рыб. Фил. Транс. Рой. Soc. Б. 2005; 360:1847–1857. doi: 10.1098/rstb.2005.1716. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 12. Хаджибабаи М., Смит М.А., Янзен Д.Х., Родригес Дж.Дж., Уитфилд Дж.Б., Хеберт П.Д.Н. Минималистичный штрих-код может идентифицировать образец, ДНК которого деградировала. Мол. Экол. Примечания. 2006; 6: 959–964. doi: 10.1111/j.1471-8286.2006.01470.x. [CrossRef] [Google Scholar] 13. Лефебур Т., Douady CJ, Gouy M., Gibert J. Связь между морфологической таксономией и молекулярной дивергенцией внутри ракообразных: предложение молекулярного порога, помогающего разграничить виды. Мол. Фил. Evol. 2006; 40: 435–447. doi: 10.1016/j.ympev.2006.03.014. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 14. Benard-Capelle J., Guillonneau V., Nouvian C., Fournier N., Le Loët K., Dettai A. Неправильная маркировка рыбы во Франции: коэффициенты замещения и типы розничной торговли. PeerJ. 2015;2:e714. doi: 10.7717/peerj.714. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 15. Паппалардо А.М., Каттитта А., Сарделла А., Муско М., Маджио Т., Патти Б., Маццола С., Феррито В. Штрих-кодирование ДНК и изменение последовательности COI у личинок средиземноморских фонарей. Гидробиология. 2015; 745:155–167. doi: 10.1007/s10750-014-2161-5. [CrossRef] [Google Scholar] 16. Паппалардо А.М., Федерико К., Сабелла Г., Сакконе С., Феррито В. Несинонимическая мутация COI как диагностический инструмент для внутривидовой дискриминации у европейского анчоуса Engraulis encrasicolus (Linnaeus) PLoS ONE.2015;10:e0143297. doi: 10.1371/journal.pone.0143297. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]17. Витале Д.Г.М., Вискузо Р., Д’Урсо В., Гибильрас С., Сарделла А., Марлетта А., Паппалардо А.М. Морфоструктурный анализ репродуктивной системы самцов и штрих-кодирование ДНК Balclutha brevis Lindberg 1954 (Homoptera, Cicadellidae) Micron. 2015;79:36–45. doi: 10.1016/j.micron.2015.08.002. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 18. Кристиансен Х., Деттаи А. , Хайндлер Ф.М., Коллинз М.A., Duhamel G., Hautecoeur M., Steinke D., Volckaert A.M., Van de Putte A.P. Разнообразие мезопелагических рыб в Южном океане – филогеографическая перспектива с использованием ДНК-штрихкодирования. Фронт. Экол. Evol. 2018;6:120. doi: 10.3389/fevo.2018.00120. [CrossRef] [Google Scholar] 19. Конти Э., Малдер К., Паппалардо А.М., Феррито В., Коста Г. Как гранулометрия почвы, температура и вода предсказывают генетическую дифференциацию намибийских пауков Ариадна и объясняют их поведение. Экол. Evol. 2019;9:4382–4391.doi: 10.1002/ece3.4929. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]20. Дауни Н., Огден Р., Макьюинг Р., Карвалью Г.Р., Торп Р.С. Валидация гена штрих-кодирования COI для использования в судебной генетической идентификации видов. Судебно-медицинская экспертиза. Int. 2007; 173:1–6. doi: 10.1016/j.forsciint.2006.09.013. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 21. Каппель К., Шредер У. Замена дорогой рыбы дешевыми видами: фальсификация камбалы в немецких ресторанах. Пищевой контроль. 2016; 59: 478–486.doi: 10.1016/j.foodcont.2015.06.024. [CrossRef] [Google Scholar] 22. Пардо М.А., Хименес Э., Видарссон Дж.Р., Олафссон К., Олафсдоттир Г., Даниэльсдоттир А.К., Перес-Вильярреал Б. Штрих-кодирование ДНК, выявляющее неправильную маркировку морепродуктов в европейских ресторанах массового питания. Пищевой контроль. 2018;92:7–16. doi: 10.1016/j.foodcont.2018.04.044. [CrossRef] [Google Scholar] 23. Султана С., Али М.Э., Хоссейн М.А.М., Асинг Накиа Н., Зайдул И.С.М. Универсальный мини-штрих-код COI для идентификации видов рыб в продуктах переработки.Еда Рез. Int. 2018;105:19–28. doi: 10.1016/j.foodres.2017.10.065. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 24. Xiong X., Yao L., Ying X., Lu L., Guardone L., Armani A., Guidi A., Xiong X. Несколько видов рыб, идентифицированных из жареного китайского филе Xue Yu с использованием ДНК и мини-ДНК штриховое кодирование: влияние на здоровье человека и устойчивость морской среды. Пищевой контроль. 2018; 88: 123–130. doi: 10.1016/j.foodcont.2017.12.035. [CrossRef] [Google Scholar] 25. Араниши Ф., Окимото Т., Изуми С. Идентификация видов тресковых (Pisces, Gadidae) с помощью анализа ПЦР-ПДРФ.Дж. Заявл. Genet. 2005; 46: 69–73. [PubMed] [Google Scholar] 26. Се С., Чанг В., Чанг Х.С., Се Х., Чун Ю., Хван Д. Идентификация коммерческого мошенничества на основе рыбы фугу в сегменте области цитохрома b с помощью анализа ПЦР-ПДРФ. Пищевая хим. 2010; 121:1305–1311. doi: 10.1016/j.foodchem.2010.02.004. [CrossRef] [Google Scholar] 27. Реа С., Сторани Г., Маскаро Н., Стокки Р., Лоски А.Р. Идентификация видов пасты из анчоусов с рынка методом ПЦР-ПДРФ. Пищевой контроль. 2009; 20: 515–520. дои: 10.1016/j.foodcont.2008.08.001. [CrossRef] [Google Scholar] 28. Чен С., Чжан Ю., Ли Х., Ван Дж., Чен В., Чжоу Ю., Чжоу С. Дифференциация видов рыб в Тайваньском проливе с помощью ПЦР-ПДРФ и системы «лаборатория на чипе». Пищевой контроль. 2014;44:26–34. doi: 10.1016/j.foodcont.2014.03.019. [CrossRef] [Google Scholar] 29. Паппалардо А. М., Феррито В. Стратегия COIBar-RFLP для быстрого обнаружения Engraulis encrasicolus в продуктах переработки анчоусов. Пищевой контроль. 2015;57:385–392. doi: 10.1016/j.foodcont.2015.03.038. [Перекрестная ссылка] [Академия Google] 30. Феррито В., Бертолино В., Паппалардо А.М. Аутентификация белой рыбы с помощью COIBar-RFLP: к общей стратегии быстрой идентификации видов в полуфабрикатах из морепродуктов. Пищевой контроль. 2016;70:130–137. doi: 10.1016/j.foodcont.2016.05.026. [CrossRef] [Google Scholar] 31. Феррито В., Паппалардо А.М. Идентификация видов морепродуктов с помощью штрих-кодирования ДНК, молекулярного инструмента для отслеживания пищевых продуктов. Биодайверы. Дж. 2017; 8:65–72. [Google Scholar] 32. Паппалардо А.М., Федерико К., Сакконе С., Феррито В. Дифференциальное обнаружение видов камбалы с помощью COIBar-RFLP в переработанных морепродуктах. Евро. Еда Рез. Technol. 2018; 244:2191–2201. doi: 10.1007/s00217-018-3129-x. [CrossRef] [Google Scholar] 33. Людвиг А. Идентификация видов Acipenseriformes в торговле. Дж. Заявл. Ихтиол. 2008; 24:2–19. doi: 10.1111/j.1439-0426.2008.01085.x. [CrossRef] [Google Scholar] 34. Чжан Д.С., Хьюитт Г.М. Ядерные интеграции: проблемы для маркеров митохондриальной ДНК. Тенденции Экол. Evol. 1996; 11: 247–251.doi: 10.1016/0169-5347(96)10031-8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 35. Бирштейн В.Дж., Дукакис П., Соркин Б., ДеСалль Р. Анализ популяции трех производящих икру видов осетровых рыб и значение для видовой идентификации черной икры. Консерв. Биол. 1998; 12: 766–775. doi: 10.1046/j.1523-1739.1998.97081.x. [CrossRef] [Google Scholar] 36. Бронци П., Розенталь Х., Гесснер Дж. Мировое производство аквакультуры осетровых: обзор. Дж. Заявл. Ихтиол. 2011;27:169–175. дои: 10.1111/j.1439-0426.2011.01757.х. [CrossRef] [Google Scholar] 37. Людвиг А., Ликфельдт Д., Ярлл Дж. Неправильно маркированная и поддельная осетровая икра из Болгарии и Румынии. Дж. Приложение. Ихтиол. 2015; 31: 587–591. doi: 10.1111/jai.12856. [CrossRef] [Google Scholar] 38. Фейн С.Р., Строган Д. Дж., Хэмлин Б.С., Хёш Р.М., ЛеМэй Дж.П. Судебно-генетическая идентификация икры осетровых рыб, поступающей в мировую торговлю. Консерв. Genet. 2013; 14: 855–874. doi: 10.1007/s10592-013-0481-z. [CrossRef] [Google Scholar] 39. Сикуро Б.Будущее производства икры в свете социальных изменений: новый рассвет для икры? Преподобный Аквак. 2019;11:204–219. doi: 10.1111/raq.12235. [CrossRef] [Google Scholar] 40. Телетча Ф. Методы молекулярной идентификации видов рыб: переоценка и возможные применения. Преподобный Рыба. Биол. Рыбы. 2009; 19: 265–293. doi: 10.1007/s11160-009-9107-4. [CrossRef] [Google Scholar] 41. Людвиг А., Дебус Л., Дженнекенс И. Молекулярный подход к контролю международной торговли черной икрой. Int. Преподобный Гидроб.2002; 87: 661–674. doi: 10.1002/1522-2632(200211)87:5/6<661::AID-IROH661>3.0.CO;2-S. [CrossRef] [Google Scholar] 42. Троккиа С., Раббито Д., Д’Анджело Р., Чиарсия Г., Абдель-Гавад Ф.К., Герьеро Г. Голубая экономика и надзор за биоразнообразием: рыбная икра заменяет быструю дискриминацию. Биодайверы. Опасность. Разновидность. 2015;С1:2. doi: 10.4172/2332-2543.S1.002. [CrossRef] [Google Scholar] 43. Беренс-Шапюи С., Малевски Т., Сучекка Э., Гейгер М.Ф., Гердер Ф., Богданович В. Различение образцов европейских карповых с помощью анализа плавления с высоким разрешением штрих-кода (Bar-HRM) – экономичный и быстрый способ распределения образцов ? Рыбы.Рез. 2018;204:61–73. doi: 10.1016/j.fishres.2018.02.007. [CrossRef] [Google Scholar]44. Иванова Н.В., Землик Т.С., Ханнер Р.Х., Хеберт П.Д.Н. Универсальные коктейли праймеров для штрихкодирования ДНК рыб. Мол. Экол. Примечания. 2007; 7: 544–548. doi: 10.1111/j.1471-8286.2007.01748.x. [Перекрестная ссылка] [Академия Google] 46. Ларкин М.А., Блэкшилдс Г., Браун Н.П., Ченна Р., Макгеттиган П.А., Маквильям Х., Валентин Ф., Уоллес И.М., Уилм А., Лопес Р. и др. Clustal W и Clustal X версии 2.0. Биоинформатика. 2007; 23: 2947–2948.doi: 10.1093/биоинформатика/btm404. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 47. Тамура К., Стечер Г., Петерсон Д. , Филипски А., Кумар С. MEGA6: Молекулярно-эволюционный генетический анализ, версия 6.0. Мол. Биол. Evol. 2013;30:2725–2729. doi: 10.1093/molbev/mst197. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]48. Фельзенштейн Дж. Пределы достоверности филогении: подход с использованием бутстрапа. Эволюция. 1985; 39: 783–791. doi: 10.1111/j.1558-5646.1985.tb00420.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar] 49.Лаго Ф.К., Алонсо М., Виетес Х.М., Эспиньейра М. Переработка морепродуктов: технология, качество и безопасность. Джон Вили и сыновья Лтд.; Хобокен, Нью-Джерси, США: 2014. Подлинность рыбы и морепродуктов – идентификация видов. [Google Scholar]

Обзор ресторана: Бланка в Бушвике

Это кульминация обеда Бланка, особенно аньолотти с расплавленным соусом из кедровых орехов и один равиоло, фаршированный калабрийской колбасой ндуха. Порция сначала показалась мне невеликодушной. Но ндуджа горит, как расплавленный воск свечи из перца чили и свиного жира, и через несколько мгновений размер порции показался мне милосердным и справедливым.

Еще одна кульминация — финал десертов, придуманный Кэти Питц, кондитером со слегка сумасшедшим игривым характером и твердым убеждением, что овощи должны быть в сладостях. Мороженое из арбузной редьки, подаваемое с кубиками прессованного арбуза и кислыми арбузными жевательными конфетами, тоже заставило меня поверить. У меня есть сомнения насчет ее сурово-горького мороженого из тревизского радиккьо с пирогом саке, но мой скептицизм по поводу прохладного супа из сельдерея, щавеля и груш растаял, когда в центре внимания оказался баланс сладкого, терпкого и травянистого вкуса.

Баранья корейка, которая лежит на прилавке в первом акте, должна быть съедена во втором акте, как сказал бы Чехов, если бы дожил до Бланки. Нежный и красный, с богатой мраморностью и сладкой полоской жира, от которой причмокивает губа, ягненок был обожжен на углях и медленно зажарен. Поданный с мерцающей кучей прозрачного мятного желе, он оправдал ожидание и предчувствие. Как и стейк. Подобно жареному цыпленку, который появился в один вечер, и жареной утке в другой, он был нарезан на довольно маленькую порцию, которая имела по крайней мере такой же вкус, как и гораздо большая порция в другом ресторане.

Кухня, столь обнаженная, как эта, должна приближаться к совершенству, а у Бланки это не совсем так. Крабовые ножки в одну ночь были еще полусырыми, а в другую тугие штопоры свежей пасты, приготовленной по-апулийски из поджаренной муки, были приготовлены очень неравномерно, с некоторыми кусочками, такими же жесткими, как сырые стебли шиитаке. Чай Генмайча, подаваемый ближе к концу одного приема пищи, был мучительно переварен. Такое невнимание может раздражать, когда чек начинается со 180 долларов на человека без учета налогов, чаевых и вина.

Время тоже имеет свою цену.Это слишком много, чтобы ожидать, что все 27 курсов будут блестящими. Но и тусклых мест тоже не должно быть много. Слегка подожженная стружка моллюска с соляной скорлупой; квадратик большеперого кальмара с шарантской дыней; отдельный курс хорошего, но не экстраординарного хлеба, возможно, имел свое тихое очарование. Но каждое из них заставляло меня желать, чтобы мистер Мирарчи редактировал свое меню так же безжалостно, как он редактирует свои блюда.